摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
前言 | 第14-16页 |
第1章 文献综述 | 第16-19页 |
1.1 牛蒡原植物和资源分布情况 | 第16页 |
1.2 化学成分研究 | 第16页 |
1.3 药理作用 | 第16-19页 |
1.3.1 免疫调节及抗炎作用 | 第16-17页 |
1.3.2 抗肿瘤作用 | 第17页 |
1.3.3 抗糖尿病作用 | 第17页 |
1.3.4 抗菌及抗病毒作用 | 第17页 |
1.3.5 抗衰老、抗疲劳作用 | 第17页 |
1.3.6 抗氧化作用 | 第17页 |
1.3.7 降血脂作用 | 第17页 |
1.3.8 对肝、肺和胃损伤的保护作用 | 第17页 |
1.3.9 治疗男性疾病 | 第17-18页 |
1.3.10 其他药理作用 | 第18-19页 |
第2章 牛蒡根、茎和叶的采收、清洗、干燥和切片工艺研究 | 第19-27页 |
2.1 四川省藏羌地区人工种植牛蒡情况 | 第19-21页 |
2.2 根、茎和叶的采收 | 第21-23页 |
2.3 根、茎和叶的清洗 | 第23页 |
2.4 根、茎和叶的切片 | 第23-24页 |
2.5 根、茎和叶的干燥 | 第24-27页 |
第3章 牛蒡根、茎、叶的水分、灰分、浸出物含量测定 | 第27-30页 |
3.1 试剂、仪器与材料 | 第27页 |
3.2 方法与结果 | 第27-29页 |
3.2.1 水分测定 | 第27页 |
3.2.2 灰分测定 | 第27页 |
3.2.3 水溶性浸出物的测定 | 第27-28页 |
3.2.4 水分测定结果 | 第28页 |
3.2.5 灰分测定结果 | 第28页 |
3.2.6 浸出物含量测定结果 | 第28-29页 |
3.3 小结 | 第29-30页 |
第4章 正交试验设计优选牛蒡根和茎叶中总多糖提取工艺和含量测定及抗氧化活性研究 | 第30-46页 |
4.1 试剂、仪器与材料 | 第30页 |
4.2 方法与结果 | 第30-45页 |
4.2.1 总多糖提取工艺流程 | 第30-31页 |
4.2.2 标准曲线的绘制 | 第31页 |
4.2.3 单因素试验 | 第31-32页 |
4.2.4 正交实验法设计优化多糖提取工艺 | 第32页 |
4.2.5 正交实验设计 | 第32-33页 |
4.2.6 验证试验 | 第33页 |
4.2.7 清除DPPH自由基能力测定 | 第33-34页 |
4.2.8 ABTS~+自由基的清除能力测定 | 第34页 |
4.2.9 还原能力测定 | 第34-35页 |
4.2.10 标准曲线的制作 | 第35页 |
4.2.11 料液比的影响 | 第35-36页 |
4.2.12 提取温度的影响 | 第36页 |
4.2.13 提取时间的影响 | 第36-37页 |
4.2.14 牛蒡总多糖含量测定 | 第37-40页 |
4.2.15 DPPH清除率测定 | 第40-42页 |
4.2.16 ABTS~+清除率测定 | 第42-43页 |
4.2.17 还原性能力测定 | 第43-45页 |
4.3 小结 | 第45-46页 |
第5章 优化牛蒡根和茎叶总黄酮的提取工艺及抗氧化活性研究 | 第46-60页 |
5.1 试剂、仪器与材料 | 第46页 |
5.2 方法与结果 | 第46-59页 |
5.2.1 牛蒡根的预处理 | 第46页 |
5.2.2 牛蒡根总黄酮提取方法 | 第46页 |
5.2.3 单因素试验 | 第46-47页 |
5.2.4 牛蒡根总黄酮含量测定 | 第47页 |
5.2.5 抗氧化活性测定 | 第47-48页 |
5.2.6 提取溶剂对牛蒡根总黄酮得率的影响 | 第48页 |
5.2.7 溶剂体积分数对牛蒡根总黄酮得率的影响 | 第48-49页 |
5.2.8 料液比对牛蒡根总黄酮得率的影响 | 第49页 |
5.2.9 提取时间对牛蒡根总黄酮得率的影响 | 第49-50页 |
5.2.10 提取温度对牛蒡根总黄酮得率的影响 | 第50页 |
5.2.11 牛蒡总黄酮的含量 | 第50-53页 |
5.2.12 DPPH清除率测定 | 第53-55页 |
5.2.13 ABTS~+清除率测定 | 第55-57页 |
5.2.14 还原性能力测定 | 第57-59页 |
5.3 小结 | 第59-60页 |
第6章 UPLC-DAD方法同时测定牛蒡根和茎叶的牛蒡苷和绿原酸含量研究 | 第60-66页 |
6.1 仪器与材料 | 第60页 |
6.2 试验方法 | 第60-63页 |
6.2.1 色谱条件 | 第60-62页 |
6.2.2 对照品溶液的制备 | 第62页 |
6.2.3 供试品溶液的制备 | 第62页 |
6.2.4 方法学考察 | 第62-63页 |
6.3 结果与分析 | 第63-65页 |
6.3.1 样品测定 | 第63-64页 |
6.3.2 讨论 | 第64-65页 |
6.4 小结 | 第65-66页 |
第7章 高效液相色谱-离子迁移谱法分离牛蒡叶中酚酸类化合物 | 第66-75页 |
7.1 试剂、仪器与材料 | 第66页 |
7.2 方法与结果 | 第66-73页 |
7.2.1 标准品的配制 | 第66页 |
7.2.2 混合标准溶液 | 第66-67页 |
7.2.3 色谱的分离条件 | 第67页 |
7.2.4 约化迁移率和分辨能力 | 第67页 |
7.2.5 试验条件 | 第67-68页 |
7.2.6 条件优化 | 第68-71页 |
7.2.7 HPLC-ESI-IMS联用分析酚酸类化合物 | 第71页 |
7.2.8 标准曲线的制备 | 第71-72页 |
7.2.9 样品制备 | 第72页 |
7.2.10 检出限 | 第72-73页 |
7.2.11 HPLC-ESI-IMS联用分析样品 | 第73页 |
7.3 小结 | 第73-75页 |
第8章 超声提取牛蒡叶中绿色素及稳定性研究 | 第75-81页 |
8.1 试剂、仪器与材料 | 第75页 |
8.2 方法与结果 | 第75-80页 |
8.2.1 牛蒡叶提取液的制备 | 第75页 |
8.2.2 牛蒡叶提取液的紫外光谱分析 | 第75-76页 |
8.2.3 稳定性试验单因素试验 | 第76页 |
8.2.4 稳定性试验 | 第76页 |
8.2.5 乙醇体积分数对牛蒡绿色素提取的影响 | 第76-77页 |
8.2.6 料液比对牛蒡绿色素提取的影响 | 第77-78页 |
8.2.7 超声时间对牛蒡绿色素提取的影响 | 第78页 |
8.2.8 提取温度对牛蒡绿色素提取的影响 | 第78-79页 |
8.2.9 水浴温度对色度稳定性的影响 | 第79页 |
8.2.10 金属离子对绿色素稳定性的影响 | 第79页 |
8.2.11 pH值对绿色素稳定性的影响 | 第79-80页 |
8.3 小结 | 第80-81页 |
第9章 湿法消解ICP-OES法测定牛蒡根和茎叶中无机元素 | 第81-84页 |
9.1 试剂、仪器与材料 | 第81页 |
9.2 方法与结果 | 第81-83页 |
9.2.1 样品处理 | 第81页 |
9.2.2 仪器条件 | 第81-82页 |
9.2.3 数据处理 | 第82-83页 |
9.3 小结 | 第83-84页 |
第10章 牛蒡地上部分与牛蒡根水提物对小鼠的急性急毒试验.. | 第84-88页 |
10.1 材料、试剂与仪器 | 第84页 |
10.2 实验动物及环境条件 | 第84-85页 |
10.3 方法与结果 | 第85-87页 |
10.3.1 药物配制 | 第85页 |
10.3.2 预试验 | 第85页 |
10.3.3 牛蒡根和牛蒡地上部分水提取物对小鼠的最大给药量测定 | 第85-87页 |
10.4 小结 | 第87-88页 |
第11章 牛蒡根与地上部分提取物对小鼠肝损伤保护作用及抗氧化作用 | 第88-95页 |
11.1 实验动物、试剂与仪器 | 第88页 |
11.2 受试药物 | 第88-89页 |
11.3 方法与结果 | 第89-93页 |
11.3.1 对ConA诱导肝损伤小鼠的保护作用 | 第89页 |
11.3.2 指标测定 | 第89页 |
11.3.3 肝组织病理形态学观察 | 第89页 |
11.3.4 对急性酒精肝损伤模型小鼠的保护作用 | 第89-90页 |
11.3.5 体外抗氧化试验(大鼠肝微粒体脂质过氧化) | 第90页 |
11.3.6 统计方法 | 第90-91页 |
11.3.7 对Con A诱导肝损伤小鼠的影响 | 第91-92页 |
11.3.8 对急性酒精肝损伤模型小鼠血清的影响 | 第92-93页 |
11.3.9 对大鼠肝微粒体脂质过氧化的影响 | 第93页 |
11.4 小结 | 第93-95页 |
结论与讨论 | 第95-98页 |
参考文献 | 第98-107页 |
公开发表的论文、专著及科研成果 | 第107-108页 |
致谢 | 第108页 |