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四川藏羌地区人工种植的牛蒡根和茎叶生药学研究

摘要第4-6页
Abstract第6-7页
前言第14-16页
第1章 文献综述第16-19页
    1.1 牛蒡原植物和资源分布情况第16页
    1.2 化学成分研究第16页
    1.3 药理作用第16-19页
        1.3.1 免疫调节及抗炎作用第16-17页
        1.3.2 抗肿瘤作用第17页
        1.3.3 抗糖尿病作用第17页
        1.3.4 抗菌及抗病毒作用第17页
        1.3.5 抗衰老、抗疲劳作用第17页
        1.3.6 抗氧化作用第17页
        1.3.7 降血脂作用第17页
        1.3.8 对肝、肺和胃损伤的保护作用第17页
        1.3.9 治疗男性疾病第17-18页
        1.3.10 其他药理作用第18-19页
第2章 牛蒡根、茎和叶的采收、清洗、干燥和切片工艺研究第19-27页
    2.1 四川省藏羌地区人工种植牛蒡情况第19-21页
    2.2 根、茎和叶的采收第21-23页
    2.3 根、茎和叶的清洗第23页
    2.4 根、茎和叶的切片第23-24页
    2.5 根、茎和叶的干燥第24-27页
第3章 牛蒡根、茎、叶的水分、灰分、浸出物含量测定第27-30页
    3.1 试剂、仪器与材料第27页
    3.2 方法与结果第27-29页
        3.2.1 水分测定第27页
        3.2.2 灰分测定第27页
        3.2.3 水溶性浸出物的测定第27-28页
        3.2.4 水分测定结果第28页
        3.2.5 灰分测定结果第28页
        3.2.6 浸出物含量测定结果第28-29页
    3.3 小结第29-30页
第4章 正交试验设计优选牛蒡根和茎叶中总多糖提取工艺和含量测定及抗氧化活性研究第30-46页
    4.1 试剂、仪器与材料第30页
    4.2 方法与结果第30-45页
        4.2.1 总多糖提取工艺流程第30-31页
        4.2.2 标准曲线的绘制第31页
        4.2.3 单因素试验第31-32页
        4.2.4 正交实验法设计优化多糖提取工艺第32页
        4.2.5 正交实验设计第32-33页
        4.2.6 验证试验第33页
        4.2.7 清除DPPH自由基能力测定第33-34页
        4.2.8 ABTS~+自由基的清除能力测定第34页
        4.2.9 还原能力测定第34-35页
        4.2.10 标准曲线的制作第35页
        4.2.11 料液比的影响第35-36页
        4.2.12 提取温度的影响第36页
        4.2.13 提取时间的影响第36-37页
        4.2.14 牛蒡总多糖含量测定第37-40页
        4.2.15 DPPH清除率测定第40-42页
        4.2.16 ABTS~+清除率测定第42-43页
        4.2.17 还原性能力测定第43-45页
    4.3 小结第45-46页
第5章 优化牛蒡根和茎叶总黄酮的提取工艺及抗氧化活性研究第46-60页
    5.1 试剂、仪器与材料第46页
    5.2 方法与结果第46-59页
        5.2.1 牛蒡根的预处理第46页
        5.2.2 牛蒡根总黄酮提取方法第46页
        5.2.3 单因素试验第46-47页
        5.2.4 牛蒡根总黄酮含量测定第47页
        5.2.5 抗氧化活性测定第47-48页
        5.2.6 提取溶剂对牛蒡根总黄酮得率的影响第48页
        5.2.7 溶剂体积分数对牛蒡根总黄酮得率的影响第48-49页
        5.2.8 料液比对牛蒡根总黄酮得率的影响第49页
        5.2.9 提取时间对牛蒡根总黄酮得率的影响第49-50页
        5.2.10 提取温度对牛蒡根总黄酮得率的影响第50页
        5.2.11 牛蒡总黄酮的含量第50-53页
        5.2.12 DPPH清除率测定第53-55页
        5.2.13 ABTS~+清除率测定第55-57页
        5.2.14 还原性能力测定第57-59页
    5.3 小结第59-60页
第6章 UPLC-DAD方法同时测定牛蒡根和茎叶的牛蒡苷和绿原酸含量研究第60-66页
    6.1 仪器与材料第60页
    6.2 试验方法第60-63页
        6.2.1 色谱条件第60-62页
        6.2.2 对照品溶液的制备第62页
        6.2.3 供试品溶液的制备第62页
        6.2.4 方法学考察第62-63页
    6.3 结果与分析第63-65页
        6.3.1 样品测定第63-64页
        6.3.2 讨论第64-65页
    6.4 小结第65-66页
第7章 高效液相色谱-离子迁移谱法分离牛蒡叶中酚酸类化合物第66-75页
    7.1 试剂、仪器与材料第66页
    7.2 方法与结果第66-73页
        7.2.1 标准品的配制第66页
        7.2.2 混合标准溶液第66-67页
        7.2.3 色谱的分离条件第67页
        7.2.4 约化迁移率和分辨能力第67页
        7.2.5 试验条件第67-68页
        7.2.6 条件优化第68-71页
        7.2.7 HPLC-ESI-IMS联用分析酚酸类化合物第71页
        7.2.8 标准曲线的制备第71-72页
        7.2.9 样品制备第72页
        7.2.10 检出限第72-73页
        7.2.11 HPLC-ESI-IMS联用分析样品第73页
    7.3 小结第73-75页
第8章 超声提取牛蒡叶中绿色素及稳定性研究第75-81页
    8.1 试剂、仪器与材料第75页
    8.2 方法与结果第75-80页
        8.2.1 牛蒡叶提取液的制备第75页
        8.2.2 牛蒡叶提取液的紫外光谱分析第75-76页
        8.2.3 稳定性试验单因素试验第76页
        8.2.4 稳定性试验第76页
        8.2.5 乙醇体积分数对牛蒡绿色素提取的影响第76-77页
        8.2.6 料液比对牛蒡绿色素提取的影响第77-78页
        8.2.7 超声时间对牛蒡绿色素提取的影响第78页
        8.2.8 提取温度对牛蒡绿色素提取的影响第78-79页
        8.2.9 水浴温度对色度稳定性的影响第79页
        8.2.10 金属离子对绿色素稳定性的影响第79页
        8.2.11 pH值对绿色素稳定性的影响第79-80页
    8.3 小结第80-81页
第9章 湿法消解ICP-OES法测定牛蒡根和茎叶中无机元素第81-84页
    9.1 试剂、仪器与材料第81页
    9.2 方法与结果第81-83页
        9.2.1 样品处理第81页
        9.2.2 仪器条件第81-82页
        9.2.3 数据处理第82-83页
    9.3 小结第83-84页
第10章 牛蒡地上部分与牛蒡根水提物对小鼠的急性急毒试验..第84-88页
    10.1 材料、试剂与仪器第84页
    10.2 实验动物及环境条件第84-85页
    10.3 方法与结果第85-87页
        10.3.1 药物配制第85页
        10.3.2 预试验第85页
        10.3.3 牛蒡根和牛蒡地上部分水提取物对小鼠的最大给药量测定第85-87页
    10.4 小结第87-88页
第11章 牛蒡根与地上部分提取物对小鼠肝损伤保护作用及抗氧化作用第88-95页
    11.1 实验动物、试剂与仪器第88页
    11.2 受试药物第88-89页
    11.3 方法与结果第89-93页
        11.3.1 对ConA诱导肝损伤小鼠的保护作用第89页
        11.3.2 指标测定第89页
        11.3.3 肝组织病理形态学观察第89页
        11.3.4 对急性酒精肝损伤模型小鼠的保护作用第89-90页
        11.3.5 体外抗氧化试验(大鼠肝微粒体脂质过氧化)第90页
        11.3.6 统计方法第90-91页
        11.3.7 对Con A诱导肝损伤小鼠的影响第91-92页
        11.3.8 对急性酒精肝损伤模型小鼠血清的影响第92-93页
        11.3.9 对大鼠肝微粒体脂质过氧化的影响第93页
    11.4 小结第93-95页
结论与讨论第95-98页
参考文献第98-107页
公开发表的论文、专著及科研成果第107-108页
致谢第108页

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