| 摘要 | 第6-7页 |
| abstract | 第7-8页 |
| 英文缩略表 | 第12-13页 |
| 第一章 引言 | 第13-22页 |
| 1.1 猪圆环病毒2型概况 | 第13-14页 |
| 1.1.1 PCV2分类学 | 第13-14页 |
| 1.1.2 PCV2形态学和理化特性 | 第14页 |
| 1.1.3 PCV2基因组结构和编码蛋白特性 | 第14页 |
| 1.2 PCV2疫苗概况 | 第14-16页 |
| 1.2.1 PCV2灭活疫苗 | 第14-15页 |
| 1.2.2 PCV2弱毒疫苗 | 第15页 |
| 1.2.3 PCV2基因工程疫苗 | 第15-16页 |
| 1.3 猪细小病毒1型概况 | 第16-17页 |
| 1.3.1 PPV1病原学 | 第17页 |
| 1.3.2 PPV1形态学与理化特性 | 第17页 |
| 1.3.3 PPV1基因组结构和编码蛋白特性 | 第17页 |
| 1.4 PPV1疫苗概况 | 第17-19页 |
| 1.4.1 PPV1灭活疫苗 | 第17-18页 |
| 1.4.2 PPV1弱毒疫苗 | 第18页 |
| 1.4.3 PPV1基因工程疫苗 | 第18-19页 |
| 1.5 PRV概况 | 第19-20页 |
| 1.5.1 PRV分类学 | 第19页 |
| 1.5.2 PRV形态结构与理化特性 | 第19页 |
| 1.5.3 PRV基因组结构及其编码产物 | 第19-20页 |
| 1.5.4 PRV活载体疫苗研究概况 | 第20页 |
| 1.6 研究目的和意义 | 第20-22页 |
| 第二章 表达PCV2-Cap蛋白和PPV1-VP2蛋白的重组伪狂犬病病毒的构建 | 第22-34页 |
| 2.1 材料和方法 | 第23-28页 |
| 2.1.1 病毒株、质粒、细胞系、菌株、抗体及主要试剂的配制 | 第23页 |
| 2.1.2 主要仪器设备 | 第23-24页 |
| 2.1.3 重组病毒rPRV-TK-/gE-/gG-/3Cap+基因组的提取 | 第24页 |
| 2.1.4 含VP2表达盒的重组质粒的构建与鉴定 | 第24页 |
| 2.1.5 含VP2表达盒的重组质粒的提取和线性化 | 第24-25页 |
| 2.1.6 重组质粒pMD18T-LR(TK)-EGFP和PRV基因组共转染PK-15细胞 | 第25页 |
| 2.1.7 表达EGFP蛋白和Cap蛋白的重组病毒的构建与鉴定 | 第25-26页 |
| 2.1.8 表达PCV2-Cap蛋白和PPV1-VP2蛋白的重组病毒的构建 | 第26页 |
| 2.1.9 表达PCV2-Cap蛋白和PPV1-VP2蛋白的重组病毒的PCR鉴定 | 第26-27页 |
| 2.1.10 PCV2-Cap蛋白和PPV1-VP2蛋白在重组病毒感染细胞中的表达鉴定 | 第27页 |
| 2.1.11 PPV1-VP2蛋白在重组病毒感染细胞中的表达与定位鉴定 | 第27页 |
| 2.1.12 重组病毒的生长动力学及毒价测定 | 第27-28页 |
| 2.2 结果 | 第28-32页 |
| 2.2.1 含VP2表达盒的重组质粒的构建和鉴定 | 第28-29页 |
| 2.2.2 表达EGFP蛋白和Cap蛋白的重组病毒的构建与鉴定 | 第29-30页 |
| 2.2.3 表达PCV2-Cap蛋白和PPV1-VP2蛋白重组病毒的构建与鉴定 | 第30-31页 |
| 2.2.4 PCV2-Cap蛋白和PPV1-VP2蛋白在重组病毒感染细胞中的表达鉴定 | 第31页 |
| 2.2.5 PPV1-VP2蛋白在重组病毒感染细胞中的表达与定位鉴定 | 第31-32页 |
| 2.2.6 重组病毒的生长动力学及毒价测定 | 第32页 |
| 2.3 讨论 | 第32-34页 |
| 第三章 表达PCV2-Cap蛋白和PPV1-VP2蛋白的重组伪狂犬病病毒的免疫原性试验 | 第34-39页 |
| 3.1 材料和方法 | 第34-35页 |
| 3.1.1 细胞系、病毒株、动物 | 第34页 |
| 3.1.2 小鼠免疫试验 | 第34-35页 |
| 3.1.3 PRV、PCV2、PPV1抗体水平检测 | 第35页 |
| 3.2 结果 | 第35-37页 |
| 3.2.1 免疫后PRV抗体水平检测 | 第35-36页 |
| 3.2.2 免疫后PCV2抗体水平检测 | 第36页 |
| 3.2.3 免疫后PPV1抗体水平检测 | 第36-37页 |
| 3.3 讨论 | 第37-39页 |
| 第四章 全文结论 | 第39-40页 |
| 参考文献 | 第40-49页 |
| 致谢 | 第49-50页 |
| 作者简历 | 第50页 |
