符号说明 | 第4-8页 |
中文摘要 | 第8-10页 |
英文摘要 | 第10-11页 |
1 前言 | 第12-22页 |
1.1 大枣资源与圆铃大枣 | 第12-13页 |
1.2 多糖应用 | 第13页 |
1.3 大枣多糖的提取方法 | 第13-16页 |
1.3.1 热水提取法 | 第13-14页 |
1.3.2 碱液提取法 | 第14页 |
1.3.3 酶提取法 | 第14-15页 |
1.3.4 超声提取法 | 第15页 |
1.3.5 微波提取法 | 第15-16页 |
1.4 大枣多糖的分离纯化 | 第16-17页 |
1.5 大枣多糖的结构 | 第17-18页 |
1.6 大枣多糖生物活性研究 | 第18-20页 |
1.6.1 抗氧化 | 第18页 |
1.6.2 免疫 | 第18-19页 |
1.6.3 抗疲劳、修复肝损伤 | 第19页 |
1.6.4 改善肠道 | 第19页 |
1.6.5 造血 | 第19-20页 |
1.7 本课题研究的目的意义及研究内容 | 第20-22页 |
1.7.1 目的意义 | 第20页 |
1.7.2 研究内容 | 第20-21页 |
1.7.3 技术路线 | 第21-22页 |
2 材料与方法 | 第22-33页 |
2.1 材料 | 第22-23页 |
2.1.1 样品 | 第22页 |
2.1.2 试剂 | 第22页 |
2.1.3 仪器 | 第22-23页 |
2.2 方法 | 第23-32页 |
2.2.1 圆铃大枣多糖提取工艺 | 第23-25页 |
2.2.1.1 工艺路线 | 第23页 |
2.2.1.2 葡萄糖标准曲线 | 第23-24页 |
2.2.1.3 多糖含量的测定 | 第24页 |
2.2.1.4 热水法提取多糖单因素试验设计 | 第24页 |
2.2.1.5 热水法提取多糖响应面优化试验设计 | 第24页 |
2.2.1.6 超声波法提取多糖单因素试验设计 | 第24-25页 |
2.2.1.7 超声波法提取多糖响应面优化试验设计 | 第25页 |
2.2.2 圆铃大枣多糖分离纯化 | 第25-27页 |
2.2.2.1 Sevag法除蛋白 | 第25-26页 |
2.2.2.2 圆铃大枣多糖透析 | 第26页 |
2.2.2.3 圆铃大枣粗多糖的分离纯化 | 第26-27页 |
2.2.3 相对分子质量测定 | 第27页 |
2.2.4 纯化后的多糖各组分单糖组成的测定 | 第27-30页 |
2.2.5 抗氧化活性测定方法 | 第30-31页 |
2.2.6 淋巴细胞增殖试验 | 第31-32页 |
2.3 数据分析 | 第32-33页 |
3 结果与分析 | 第33-55页 |
3.1 多糖提取条件的优化 | 第33-43页 |
3.1.1 热水法提取条件对圆铃大枣多糖得率的影响 | 第33-38页 |
3.1.1.1 葡萄糖标准曲线 | 第33页 |
3.1.1.2 液料比对大枣多糖得率的影响 | 第33-34页 |
3.1.1.3 温度对大枣多糖得率的影响 | 第34页 |
3.1.1.4 提取时间对大枣多糖得率的影响 | 第34-35页 |
3.1.1.5 热水法提取圆铃大枣多糖工艺条件的优化 | 第35-38页 |
3.1.2 超声波法提取条件对圆铃大枣多糖得率的影响 | 第38-43页 |
3.1.2.1 液料比对大枣多糖得率的影响 | 第38页 |
3.1.2.2 超声功率对大枣多糖得率的影响 | 第38-39页 |
3.1.2.3 提取温度对多糖得率的影响 | 第39页 |
3.1.2.4 超声时间对多糖得率的影响 | 第39-40页 |
3.1.2.5 超声波法提取圆铃大枣多糖工艺条件的优化 | 第40-43页 |
3.2 圆铃大枣多糖的分离纯化 | 第43-46页 |
3.2.1 Sevag法除蛋白 | 第43-44页 |
3.2.2 圆铃大枣多糖的分离 | 第44-45页 |
3.2.3 圆铃大枣多糖的纯化 | 第45-46页 |
3.2.4 YP1a、YP2、YP3和YP4a的紫外检测 | 第46页 |
3.3 YP1a、YP2、YP3和YP4a相对分子质量测定 | 第46-47页 |
3.4 YP1a、YP2、YP3和YP4a的单糖组成测定 | 第47-50页 |
3.5 圆铃大枣多糖的抗氧化活性 | 第50-53页 |
3.6 大枣多糖对淋巴细胞增殖的影响 | 第53-55页 |
4 讨论 | 第55-58页 |
5 结论 | 第58-59页 |
参考文献 | 第59-65页 |
致谢 | 第65-66页 |
攻读学位期间发表的论文情况 | 第66页 |