| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 英文缩略词、符号及中文名称 | 第7-11页 |
| 1 前言 | 第11-24页 |
| 1.1 低温环境的真菌多样性 | 第11-18页 |
| 1.1.1 低温环境的特点 | 第11-13页 |
| 1.1.2 低温真菌的研究现状 | 第13-15页 |
| 1.1.3 低温真菌Geomyces spp.的研究进展 | 第15-17页 |
| 1.1.4 Pseudogymnoascus roseus的研究概况 | 第17页 |
| 1.1.5 Geomyces destructans的研究概况 | 第17-18页 |
| 1.1.6 Geomyces pannorum的研究概况 | 第18页 |
| 1.2 真菌群体遗传的相关研究 | 第18-21页 |
| 1.2.1 真菌群体遗传的研究进展 | 第19页 |
| 1.2.2 真菌群体遗传的方法 | 第19-21页 |
| 1.3 真菌次级代谢产物的开发 | 第21-22页 |
| 1.4 本研究的目的与意义 | 第22-24页 |
| 2 材料与方法 | 第24-36页 |
| 2.1 试验材料 | 第24-25页 |
| 2.1.1 试验土样 | 第24-25页 |
| 2.1.2 试验供试菌株 | 第25页 |
| 2.2 试验试剂与仪器 | 第25页 |
| 2.2.1 试验试剂 | 第25页 |
| 2.2.2 试验仪器 | 第25页 |
| 2.3 试验方法 | 第25-28页 |
| 2.3.1 试验试剂的配制 | 第25-26页 |
| 2.3.2 试验土样的采集 | 第26页 |
| 2.3.3 土壤真菌的分离 | 第26-27页 |
| 2.3.4 土壤真菌的纯化和培养 | 第27-28页 |
| 2.4 真菌的前期培养与形态观察 | 第28-30页 |
| 2.4.1 真菌的前期培养 | 第28页 |
| 2.4.2 “十”字玻片培养法 | 第28页 |
| 2.4.3 插片培养法 | 第28-29页 |
| 2.4.4 形态学观察 | 第29-30页 |
| 2.4.5 温度筛选试验 | 第30页 |
| 2.4.6 菌种保存 | 第30页 |
| 2.5 真菌菌株DNA的提取 | 第30-32页 |
| 2.5.1 热裂解法提取DNA | 第30-31页 |
| 2.5.2 CTAB-苯酚抽提法提取DNA | 第31页 |
| 2.5.3 PCR扩增 | 第31-32页 |
| 2.6 PCR产物的回收与纯化 | 第32-33页 |
| 2.6.1 PCR产物回收 | 第32-33页 |
| 2.6.2 PCR产物纯化 | 第33页 |
| 2.7 测序及序列分析 | 第33-34页 |
| 2.8 馏分抑菌测试 | 第34-36页 |
| 3 结果与分析 | 第36-50页 |
| 3.1 低温环境Geomyces的分离 | 第36-37页 |
| 3.2 Geomyces菌株在不同温度下的生长速率 | 第37-41页 |
| 3.3 Geomyces菌株形态特征 | 第41-44页 |
| 3.3.1 Geomyces菌株产孢结构特征 | 第41-42页 |
| 3.3.2 Geomyces菌株孢子形态特征 | 第42页 |
| 3.3.3 P.roseus的形态特征 | 第42-43页 |
| 3.3.4 G.pannorum的形态特征 | 第43-44页 |
| 3.4 Geomyces新种的鉴定 | 第44-46页 |
| 3.5 G.pannorom菌株的群体遗传研究 | 第46-48页 |
| 3.6 真菌馏分的抑菌活性测定 | 第48-50页 |
| 4 结论与讨论 | 第50-52页 |
| 4.1 结论 | 第50页 |
| 4.2 讨论 | 第50-52页 |
| 4.2.1 Geomyces的分离和鉴定 | 第50-51页 |
| 4.2.2 Geomyces的生态多样性 | 第51页 |
| 4.2.3 Geomyces天然产物在防治植物病害方面有待开发 | 第51-52页 |
| 致谢 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-59页 |
| 附录A 实验常用试剂 | 第59页 |
| 附录B 实验常用仪器 | 第59-60页 |
| 附录C | 第60页 |
