| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5页 |
| 第一章 引言 | 第9-18页 |
| 1.1 TA系统概述 | 第9-11页 |
| 1.1.1 Ⅰ型TA系统 | 第9-10页 |
| 1.1.2 Ⅱ型TA系统 | 第10页 |
| 1.1.3 Ⅲ型TA系统 | 第10-11页 |
| 1.1.4 Ⅳ型TA系统 | 第11页 |
| 1.1.5 Ⅴ型TA系统 | 第11页 |
| 1.2 TA系统的生理功能 | 第11-14页 |
| 1.2.1 TA系统和生物膜的形成 | 第11-12页 |
| 1.2.2 TA系统和持留菌的生成 | 第12-13页 |
| 1.2.3 TA系统和噬菌体感染 | 第13页 |
| 1.2.4 毒素蛋白质是全局性转录调控因子 | 第13页 |
| 1.2.5 冗余TA系统的作用 | 第13-14页 |
| 1.2.6 TA系统的毒性作用 | 第14页 |
| 1.3 Ⅱ型TA系统MqsR-MqsA的研究进展 | 第14-16页 |
| 1.3.1 MqsR-MqsA的结构分析 | 第14-15页 |
| 1.3.2 MqsR-MqsA的功能分析 | 第15-16页 |
| 1.4 荧光假单胞菌和生物膜成分的关系 | 第16-18页 |
| 1.4.1 植物生长促生菌的概述 | 第16页 |
| 1.4.2 荧光假单胞菌2P24的概述 | 第16-18页 |
| 第二章 实验材料 | 第18-20页 |
| 2.1 实验试剂和实验仪器 | 第18-20页 |
| 2.1.1 试剂 | 第18页 |
| 2.1.2 仪器 | 第18-20页 |
| 第三章 实验方法 | 第20-25页 |
| 3.1 菌株,质粒和培养条件 | 第20页 |
| 3.1.1 菌株 | 第20页 |
| 3.1.2 质粒 | 第20页 |
| 3.1.3 培养条件 | 第20页 |
| 3.2 载体构建,蛋白质的表达和纯化 | 第20-21页 |
| 3.2.1 载体构建 | 第20页 |
| 3.2.2 蛋白质的表达和纯化 | 第20-21页 |
| 3.3 凝胶迁移阻滞实验 | 第21页 |
| 3.4 LacZ报告质粒的构建和β-半乳糖苷酶活性检测 | 第21-22页 |
| 3.4.1 LacZ报告质粒的构建 | 第21-22页 |
| 3.4.2 β-半乳糖苷酶活性检测 | 第22页 |
| 3.5 刚果红染色实验和流动性实验 | 第22-23页 |
| 3.5.1 刚果红染色实验 | 第22页 |
| 3.5.2 流动性实验 | 第22-23页 |
| 3.6 P.fluorescens2P24敲除株和超表达菌株的构建 | 第23页 |
| 3.6.1 P.fluorescens2P24敲除株的构建 | 第23页 |
| 3.6.2 P.fluorescens2P24超表达菌株的构建 | 第23页 |
| 3.7 RNA的提取和实时荧光定量PCR | 第23-24页 |
| 3.8 DNseI足迹法实验 | 第24页 |
| 3.9 菌体总蛋白质的提取和质谱分析 | 第24-25页 |
| 3.9.1 菌体总蛋白质的提取 | 第24页 |
| 3.9.2 质谱分析 | 第24-25页 |
| 第四章 实验结果 | 第25-41页 |
| 4.1 PfMqsA可以结合PfMqsRA上游的启动子区域 | 第25-30页 |
| 4.2 PfMqsA抑制基因agtR的表达 | 第30-32页 |
| 4.3 PfMqsA通过作用于基因agtR来降低生物膜成分的生成 | 第32-34页 |
| 4.4 AgtR直接调控fap和pga基因簇的表达来影响生物膜成分的生成 | 第34-38页 |
| 4.5 AgtR作为一个全局性的转录因子来影响基因的表达 | 第38-41页 |
| 第五章 实验讨论和展望 | 第41-44页 |
| 参考文献 | 第44-50页 |
| 在学期间的研究成果 | 第50-51页 |
| 附录 | 第51-59页 |
| 致谢 | 第59页 |
