摘要 | 第3-4页 |
abstract | 第4页 |
第一章 吡咯的多组分合成方法概述 | 第7-33页 |
1.背景介绍 | 第7-8页 |
1.1 关于吡咯的介绍 | 第7-8页 |
1.2 关于多组分反应的介绍 | 第8页 |
2.吡咯的多组分合成方法 | 第8-29页 |
2.1 以胺类和二羰基化合物为底物的反应 | 第8-16页 |
2.2 以硝基烷烃或者硝基烯烃为底物的反应 | 第16-20页 |
2.3 以炔烃为原料合成吡咯 | 第20-24页 |
2.4 以异腈或者腈为底物合成吡咯 | 第24-28页 |
2.5 其他类型的反应底物合成吡咯 | 第28-29页 |
3.结论 | 第29-31页 |
参考文献 | 第31-33页 |
第二章 多取代吡咯衍生化及其生物活性研究 | 第33-55页 |
2.1 背景介绍 | 第33页 |
2.2 源于微生物中的乙酰胆碱酯酶抑制剂 | 第33-37页 |
2.2.1 真菌中的AChEIs | 第33-35页 |
2.2.2 细菌中的AChEIs | 第35-36页 |
2.2.3 其他种类的AChEIs | 第36-37页 |
2.3 源于中草药中的乙酰胆碱酯酶抑制剂 | 第37-42页 |
2.3.1 绿茶及其茶多酚提取物 | 第37-38页 |
2.3.2 小檗碱及其衍生物 | 第38-39页 |
2.3.3 淫羊藿苷及其衍生物 | 第39-40页 |
2.3.4 人参皂苷及皂苷提取物 | 第40-41页 |
2.3.5 姜黄素及其衍生物 | 第41页 |
2.3.6 灵芝提取物及其衍生物 | 第41-42页 |
2.4 小结 | 第42-43页 |
2.5 多取代吡咯生物活性的测试与研究 | 第43-48页 |
2.5.1 乙酰胆碱酯酶活性测试原理及方法 | 第43页 |
2.5.2 乙酰胆碱酯酶活性测试过程 | 第43-44页 |
2.5.3 生物活性测试结果 | 第44-48页 |
2.6 实验方法 | 第48-50页 |
2.6.1 仪器与试剂 | 第49页 |
2.6.2 多取代吡咯类化合物的合成方法 | 第49页 |
2.6.3 多取代吡咯类化合物的衍生化 | 第49-50页 |
2.7 代表性化合物实验数据 | 第50-53页 |
参考文献 | 第53-55页 |
第三章 有机小分子催化的α-氨基丙二腈参与的不对称 Michael 加成反应 | 第55-77页 |
3.1 背景介绍 | 第55页 |
3.2 不对称Michael加成反应 | 第55-64页 |
3.2.1 α,β-不饱和醛或酮电子受体 | 第55-56页 |
3.2.2 亲核试剂的类型 | 第56-61页 |
3.2.3 手性胺分子催化剂 | 第61-64页 |
3.3 关于α-氨基丙二腈 | 第64-66页 |
3.3.1 卡宾中间体、1,3-偶极子 | 第65-66页 |
3.3.2 亚胺正离子中间体 | 第66页 |
3.3.3 碳负离子中间体 | 第66页 |
3.4 研究方法 | 第66-71页 |
3.5 实验方法 | 第71-73页 |
3.5.1 仪器与试剂 | 第71-72页 |
3.5.2 制备α-氨基丙二腈 | 第72-73页 |
3.5.3 制备不对称Michael加成反应产物 | 第73页 |
3.5.4 制备Wittig反应产物 | 第73页 |
3.6 代表性化合物核磁数据 | 第73-75页 |
参考文献 | 第75-77页 |
附录:代表性化合物核磁谱图 | 第77-89页 |
硕士期间已发表论文 | 第89-90页 |
致谢 | 第90页 |