| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 缩略语表 | 第10-11页 |
| 1 前言 | 第11-20页 |
| 1.1 HIV概论 | 第11-12页 |
| 1.2 HIV疫苗的研究进展 | 第12页 |
| 1.3 RV144艾滋病疫苗泰国临床实验 | 第12-16页 |
| 1.3.1 疫苗的设计理念及组成 | 第12-13页 |
| 1.3.2 RV144疫苗接种情况与统计学分析 | 第13-14页 |
| 1.3.3 RV144疫苗的临床分析 | 第14-16页 |
| 1.4 RV144艾滋病疫苗的研究意义以及现有研究的局限性 | 第16-17页 |
| 1.5 人源化小鼠 | 第17-19页 |
| 1.5.1 人源化小鼠动物模型的发展 | 第17-19页 |
| 1.5.2 本课题选取的Humanized-BLT mice的优势 | 第19页 |
| 1.6 研究的目的与意义 | 第19-20页 |
| 2 材料与方法 | 第20-31页 |
| 2.1 材料与设备 | 第20-22页 |
| 2.1.1 材料 | 第20-22页 |
| 2.1.2 设备 | 第22页 |
| 2.2 实验方法 | 第22-31页 |
| 2.2.1 CD34+HSCs的提取与纯化 | 第22-25页 |
| 2.2.2 流式细胞术检测提取出的CD34+HSCs | 第25页 |
| 2.2.3 手术后小鼠体内人类淋巴细胞比例的检测 | 第25页 |
| 2.2.4 疫苗接种的时间与剂量 | 第25-27页 |
| 2.2.5 酶联免疫反应试验ELISA | 第27-28页 |
| 2.2.6 Western Blot | 第28页 |
| 2.2.7 细胞胞内因子染色检测技术 | 第28-31页 |
| 3 结果与分析 | 第31-41页 |
| 3.1 CD34+HSCs的得率 | 第31-33页 |
| 3.3 重组小鼠体内人类淋巴细胞的比例 | 第33-35页 |
| 3.3.1 小鼠接种疫苗后存活情况以及样品收集情况 | 第34-35页 |
| 3.3.2 疫苗接种时间以及剂量的参考意义 | 第35页 |
| 3.4 ELISA检测小鼠plasma中含有的抗gp120抗体情况 | 第35-36页 |
| 3.5 Western Blot检测RV144诱导产生的HIV-1特异性抗体情况 | 第36-38页 |
| 3.6 检测人源化小鼠细胞免疫反应实验体系的建立 | 第38-41页 |
| 3.6.1 肽库的划分 | 第38-39页 |
| 3.6.2 细胞胞内因子检测平台的建立 | 第39-41页 |
| 4 讨论与展望 | 第41-43页 |
| 参考文献 | 第43-49页 |
| 致谢 | 第49页 |
