| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5页 |
| 1. 文献综述 | 第9-26页 |
| 1.1 组织工程的研究概况 | 第9-11页 |
| 1.1.1 组织工程的研究方法 | 第9-10页 |
| 1.1.2 组织工程研究的基本要素 | 第10-11页 |
| 1.1.3 组织工程的局限 | 第11页 |
| 1.2 水凝胶的研究概况 | 第11-18页 |
| 1.2.1 天然水凝胶材料及应用 | 第12-17页 |
| 1.2.2 合成水凝胶材料及应用 | 第17-18页 |
| 1.3 生物打印的研究概况 | 第18-24页 |
| 1.4 课题的提出 | 第24-26页 |
| 1.4.1 将普通打印机改造成生物打印机 | 第24页 |
| 1.4.2 开发以壳聚糖及其衍生物为材料的“生物墨水” | 第24-26页 |
| 2 细胞阵列的构建 | 第26-35页 |
| 2.1 引言 | 第26-27页 |
| 2.2 实验部分 | 第27-32页 |
| 2.2.1 实验试剂 | 第27页 |
| 2.2.2 溶液配制 | 第27-28页 |
| 2.2.3 实验仪器 | 第28页 |
| 2.2.4 细胞的常规培养 | 第28-29页 |
| 2.2.5 打印机和墨盒的生物改造 | 第29-31页 |
| 2.2.6 “细胞墨水”的制备和打印 | 第31页 |
| 2.2.7 “细胞墨水”最佳浓度的确定 | 第31页 |
| 2.2.8 打印输出的细胞数量和细胞活死情况 | 第31-32页 |
| 2.3 实验结果和讨论 | 第32-34页 |
| 2.3.1 改造的打印机和墨盒 | 第32页 |
| 2.3.2 细胞打印的效果 | 第32-33页 |
| 2.3.3 “细胞墨水”最佳浓度的确定 | 第33-34页 |
| 2.3.4 输出的细胞数量和活性分析 | 第34页 |
| 2.4 本节结论 | 第34-35页 |
| 3. 细胞-药物复合阵列的构建及在体外活性评价中的应用 | 第35-41页 |
| 3.2 实验部分 | 第36-37页 |
| 3.2.1 实验试剂 | 第36页 |
| 3.2.2 实验仪器 | 第36页 |
| 3.2.3 5-FU的HPLC含量分析 | 第36页 |
| 3.2.4 “药物墨水”的制备和打印 | 第36-37页 |
| 3.2.5 细胞-药物复合阵列的构建及在体外药物活性评价中的应用 | 第37页 |
| 3.3 实验结果和讨论 | 第37-40页 |
| 3.3.1 5-FU的HPLC含量分析方法验证 | 第37-39页 |
| 3.3.2 不同RGB值输出5-FU的含量 | 第39-40页 |
| 3.3.3 Mcf-7/5-FU复合微阵列在体外药物活性评价中的应用 | 第40页 |
| 3.4 本节结论 | 第40-41页 |
| 4. 壳聚糖季铵盐的合成及理化特性研究 | 第41-51页 |
| 4.1 引言 | 第41-42页 |
| 4.2 实验部分 | 第42-44页 |
| 4.2.1 实验试剂 | 第42页 |
| 4.2.2 实验仪器 | 第42页 |
| 4.2.3 HTCC的合成 | 第42-43页 |
| 4.2.4 HTCC的结构表征 | 第43页 |
| 4.2.5 HTCC的产率、粘度、取代度和水溶性 | 第43-44页 |
| 4.2.6 制备不同反应时间HTCC-GP温敏凝胶 | 第44页 |
| 4.3 实验结果和讨论 | 第44-50页 |
| 4.3.1 HTCC的红外结构表征 | 第44-45页 |
| 4.3.2 HTCC的水溶性和酸碱稳定性 | 第45-47页 |
| 4.3.3 反应时间对HTCC产率、粘度和取代度的影响 | 第47-48页 |
| 4.3.4 制备不同反应时间HTCC-GP温敏凝胶 | 第48-50页 |
| 4.4 本节结论 | 第50-51页 |
| 5. 基于3D打印技术构建体外三维细胞生物模型 | 第51-71页 |
| 5.1 引言 | 第51-52页 |
| 5.2 实验那份 | 第52-57页 |
| 5.2.1 实验试剂 | 第52-53页 |
| 5.2.2 实验仪器 | 第53页 |
| 5.2.3 大鼠肝原代细胞的提取 | 第53-54页 |
| 5.2.4 氯化钙溶液最佳浓度的确定 | 第54-55页 |
| 5.2.5 HTCC-Gel-SA复合凝胶的制备 | 第55页 |
| 5.2.6 水溶胶的体外细胞生物相容性 | 第55页 |
| 5.2.7 细胞-水溶胶共混物的制备 | 第55-56页 |
| 5.2.8 3D打印机的改造调试和细胞-水溶胶共混物的三维打印 | 第56页 |
| 5.2.9 三维结构体的荧光染色 | 第56页 |
| 5.2.10 三维结构体内细胞的代谢活性 | 第56-57页 |
| 5.3 实验结果和讨论 | 第57-70页 |
| 5.3.1 氯化钙溶液的最佳浓度 | 第57-58页 |
| 5.3.2 HTCC-Gel-SA复合凝胶的体外生物相容性 | 第58-59页 |
| 5.3.3 3D打印机的改装调试和工作参数的确定 | 第59-62页 |
| 5.3.4 两种“生物墨水”打印效果的比较 | 第62-63页 |
| 5.3.5 观察打印构建的三维结构体 | 第63-65页 |
| 5.3.6 三维结构体的荧光染色 | 第65-66页 |
| 5.3.7 打印后立即考察三维结构体内细胞活力 | 第66-67页 |
| 5.3.8 三维结构体的代谢活性 | 第67-70页 |
| 5.4 本节结论 | 第70-71页 |
| 结论 | 第71-72页 |
| 参考文献 | 第72-76页 |
| 攻读硕士学位期间发表学术论文情况 | 第76-77页 |
| 致谢 | 第77-78页 |
