摘要 | 第5-6页 |
英文摘要 | 第6页 |
1 前言 | 第9-16页 |
1. 1 研究背景 | 第9-11页 |
1. 2 选题依据 | 第11-12页 |
1. 3 实验方案 | 第12-13页 |
1. 4 研究目的及意义 | 第13-16页 |
2 文献综述 | 第16-36页 |
2. 1 凋亡通路调节机制 | 第16-22页 |
2. 1. 1 凋亡通路 | 第16-17页 |
2. 1. 2 线粒体介导的凋亡通路 | 第17-21页 |
2. 1. 2. 1 Bcl-2家族蛋白 | 第17-18页 |
2. 1. 2. 2 线粒体通透性转变孔 | 第18-19页 |
2. 1. 2. 3 线粒体释放促凋亡蛋白 | 第19-21页 |
2. 1. 3 Caspase与细胞凋亡 | 第21-22页 |
2. 1. 3. 1 Caspase-3的活化与细胞凋亡 | 第21-22页 |
2. 1. 3. 2 Caspase-3的底物 | 第22页 |
2. 2 细胞凋亡与帕金森疾病 | 第22-24页 |
2. 3 帕金森疾病细胞及动物模型研究进展 | 第24-27页 |
2. 4 中药菟丝子的研究进展 | 第27-36页 |
2. 4. 1 菟丝子的自然状况 | 第27-28页 |
2. 4. 2 菟丝子的化学成分 | 第28页 |
2. 4. 3 菟丝子的药理作用 | 第28-36页 |
3. MPP~+诱导的PC12细胞凋亡模型 | 第36-48页 |
3. 1 实验材料与设备 | 第37-38页 |
3. 1. 1 实验材料 | 第37页 |
3. 1. 2 实验设备 | 第37-38页 |
3. 2实验方法 | 第38-39页 |
3. 2. 1 PC12细胞培养 | 第38页 |
3. 2. 2 MPP~+对PC12细胞的损伤 | 第38页 |
3. 2. 3 Hoechst 33258染色观察细胞形态变化 | 第38-39页 |
3. 2. 4 流式细胞仪分析细胞凋亡比率 | 第39页 |
3. 2. 5 流式细胞仪分析p53、 Bcl-2和Bax蛋白 | 第39页 |
3. 3 实验结果 | 第39-44页 |
3. 3. 1 MPP~+引起PC12细胞损伤的时间和剂量关系 | 第39-40页 |
3. 3. 2 Hoechst 33258染色法观察细胞凋亡 | 第40-41页 |
3. 3. 3 流式细胞仪分析PC12细胞凋亡比率 | 第41页 |
3. 3. 4 MPP~+对P53蛋白的影响 | 第41页 |
3. 3. 5 MPP~+对Bcl-2家族蛋白的影响 | 第41-44页 |
3. 4 讨论 | 第44-45页 |
3. 5 小结 | 第45-48页 |
4. 菟丝子提取物抑制PC12细胞凋亡的作用机制 | 第48-60页 |
4. 1 实验材料及设备 | 第48-49页 |
4. 1. 1 实验材料 | 第48-49页 |
4. 1. 2 实验设备 | 第49页 |
4. 2 实验方法 | 第49-51页 |
4. 2. 1 菟丝子提取物制备 | 第49-50页 |
4. 2. 2 PC12细胞培养 | 第50页 |
4. 2. 3 菟丝子提取物对PC12细胞的毒性分析 | 第50页 |
4. 2. 4 菟丝子提取物对MPP~+诱导的PC12细胞损伤的作用 | 第50页 |
4. 2. 5 细胞形态学的观察 | 第50-51页 |
4. 2. 6 流式细胞仪分析细胞凋亡比率 | 第51页 |
4. 2. 7 流式细胞仪分析p53、 Bcl-2和Bax蛋白 | 第51页 |
4. 3 实验结果 | 第51-58页 |
4. 3. 1 菟丝子萃取物对PC12细胞的毒性作用 | 第51页 |
4. 3. 2 菟丝子萃取物对MPP~+诱导的PC12细胞损伤的保护作用 | 第51-53页 |
4. 3. 3 菟丝子提取物制备 | 第53页 |
4. 3. 4 菟丝子提取物对MPP~+诱导的PC12细胞损伤的保护 | 第53-54页 |
4. 3. 5 Hoechst 33258染色法观察PC12细胞形态变化 | 第54页 |
4. 3. 6 流式细胞仪分析细胞凋亡比率 | 第54-55页 |
4. 3. 6 菟丝子提取物对P53蛋白的影响 | 第55-56页 |
4. 3. 7 菟丝子提取物对Bcl-2家族蛋白的影响 | 第56-58页 |
4. 4 讨论 | 第58页 |
4. 5 小结 | 第58-60页 |
5. 结论与创新 | 第60-61页 |
发表论文 | 第61-62页 |
致谢 | 第62-63页 |