| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-8页 |
| 第一章 绪论 | 第13-43页 |
| 1.1 肥胖引起的代谢性炎症与疾病 | 第13-20页 |
| 1.1.1 肥胖与胰岛素抵抗和2型糖尿病 | 第14-16页 |
| 1.1.2 肥胖与肝脏疾病 | 第16-17页 |
| 1.1.3 肥胖与癌症 | 第17-18页 |
| 1.1.4 肥胖与心血管类疾病 | 第18-20页 |
| 1.2 脂肪组织代谢性炎症的发生机制 | 第20-26页 |
| 1.2.1 天然免疫细胞与脂肪组织代谢性炎症 | 第20-25页 |
| 1.2.2 获得性免疫细胞与脂肪组织代谢性炎症 | 第25-26页 |
| 1.3 NKT细胞简介 | 第26-39页 |
| 1.3.1 CD1d分子 | 第27-29页 |
| 1.3.2 NKT细胞的发育 | 第29-31页 |
| 1.3.3 iNKT细胞的亚群 | 第31-32页 |
| 1.3.4 NKT细胞的功能 | 第32-39页 |
| 1.4 NKT细胞与代谢性炎症 | 第39-43页 |
| 第二章 材料与方法 | 第43-59页 |
| 2.1 实验动物 | 第43页 |
| 2.2 实验试剂 | 第43-47页 |
| 2.2.1 小鼠组织细胞提取与分离相关试剂 | 第43页 |
| 2.2.2 细胞富集相关试剂 | 第43-44页 |
| 2.2.3 体外细胞培养或刺激相关试剂 | 第44页 |
| 2.2.4 动物实验相关试剂 | 第44页 |
| 2.2.5 RT-PCR相关试剂 | 第44-45页 |
| 2.2.6 Western blot相关试剂 | 第45-46页 |
| 2.2.7 流式细胞术相关试剂 | 第46-47页 |
| 2.2.8 细胞因子检测相关试剂 | 第47页 |
| 2.3 实验器材 | 第47-49页 |
| 2.3.1 动物实验及细胞分离和培养相关实验器材 | 第47-48页 |
| 2.3.2 试剂配制相关器材 | 第48页 |
| 2.3.3 分子生物学相关器材 | 第48页 |
| 2.3.4 其他实验相关器材 | 第48-49页 |
| 2.4 实验方法 | 第49-59页 |
| 2.4.1 小鼠组织细胞提取分离 | 第49-50页 |
| 2.4.2 细胞流式细胞术检测 | 第50页 |
| 2.4.3 细胞磁珠富集 | 第50-51页 |
| 2.4.4 CBA kit检测细胞因子 | 第51页 |
| 2.4.5 小鼠GTT/ITT检测 | 第51-52页 |
| 2.4.6 体外细胞刺激实验 | 第52页 |
| 2.4.7 ELISA检测IL2分泌 | 第52-53页 |
| 2.4.8 抽提组织RNA和荧光定量PCR检测 | 第53-54页 |
| 2.4.9 共聚焦检测 | 第54页 |
| 2.4.10 NKT细胞系的培养和冻存 | 第54-55页 |
| 2.4.11 Western blot检测 | 第55-57页 |
| 2.4.12 统计学分析 | 第57-59页 |
| 第三章 实验结果 | 第59-83页 |
| 3.1 引言 | 第59-60页 |
| 3.2 实验结果 | 第60-83页 |
| 3.2.1 肥胖小鼠脂肪组织M2巨噬细胞CD1d特异性下调且早于代谢性炎症 | 第60-64页 |
| 3.2.2 M2巨噬细胞CD1d特异性下调使M1成为NKT的主要抗原提呈细胞 | 第64-68页 |
| 3.2.3 不同抗原提呈细胞影响NKT细胞对血糖不耐受的调控能力 | 第68-73页 |
| 3.2.4 阻断肥胖小鼠M2-NKT相互作用促进代谢性炎症 | 第73-77页 |
| 3.2.5 阻断肥胖小鼠M1-NKT相互作用抑制代谢性炎症和胰岛素抵抗 | 第77-83页 |
| 第四章 结论与讨论 | 第83-87页 |
| 参考文献 | 第87-115页 |
| 致谢 | 第115-117页 |
| 在读期间发表的学术论文与取得的其他研究成果 | 第117-118页 |
