| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5页 |
| 第1章 绪论 | 第8-20页 |
| 1.1 课题背景及研究的目的和意义 | 第8-9页 |
| 1.2 microRNA研究进展 | 第9-13页 |
| 1.2.1 microRNA简介及作用机制 | 第9-11页 |
| 1.2.2 microRNA与脑胶质瘤的关系 | 第11-13页 |
| 1.3 miR-370的研究进展 | 第13-16页 |
| 1.3.1 miR-370的发现 | 第13页 |
| 1.3.2 miR-370的功能及研究进展 | 第13-16页 |
| 1.4 DNMT3A基因研究现状 | 第16-19页 |
| 1.4.1 DNMT3A简介 | 第16-17页 |
| 1.4.2 DNMT3A基因在肿瘤中研究进展 | 第17-19页 |
| 1.5 本论文主要研究内容 | 第19页 |
| 1.6 技术路线 | 第19-20页 |
| 第2章 材料方法 | 第20-33页 |
| 2.1 实验材料 | 第20-23页 |
| 2.1.1 实验细胞系及载体 | 第20页 |
| 2.1.2 实验试剂 | 第20-21页 |
| 2.1.3 实验仪器 | 第21-22页 |
| 2.1.4 实验所用分析软件及网站 | 第22-23页 |
| 2.2 实验方法 | 第23-33页 |
| 2.2.0 细胞转染 | 第23-24页 |
| 2.2.1 细胞RNA的提取 | 第24页 |
| 2.2.2 miRNA及mRNA反转录 | 第24-25页 |
| 2.2.3 常规PCR及实时荧光定PCR | 第25-26页 |
| 2.2.4 MTT增殖实验 | 第26-27页 |
| 2.2.5 细胞划痕实验 | 第27页 |
| 2.2.6 细胞凋亡实验 | 第27-28页 |
| 2.2.7 细胞周期实验 | 第28页 |
| 2.2.8 荧光素酶DNMT3A重组载体构建及双荧光素酶的检测 | 第28-30页 |
| 2.2.9 Western Blot实验 | 第30-33页 |
| 第3章 miR-370抑制脑胶质瘤细胞增殖与迁移 | 第33-44页 |
| 3.1 引言 | 第33页 |
| 3.2 miR-370抑制脑胶质瘤细胞增殖 | 第33-37页 |
| 3.2.1 miR-370在胶质瘤组织中的表达情况 | 第33-34页 |
| 3.2.2 miR-370在脑胶质瘤细胞系中表达情况 | 第34-35页 |
| 3.2.3 miR-370在脑胶质瘤细胞系中过表达及低表达效果检测 | 第35-36页 |
| 3.2.4 miR-370对脑胶质瘤细胞增殖的影响 | 第36-37页 |
| 3.3 miR-370对脑胶质瘤细胞凋亡的影响 | 第37-38页 |
| 3.4 miR-370对脑胶质瘤细胞周期的影响 | 第38-39页 |
| 3.5 miR-370对脑胶质瘤细胞迁移的影响 | 第39-41页 |
| 3.6 讨论 | 第41-42页 |
| 3.7 本章小结 | 第42-44页 |
| 第4章 miR-370靶向调控DNMT3A的表达 | 第44-52页 |
| 4.1 引言 | 第44-45页 |
| 4.2 生物信息学预测miR-370的靶基因 | 第45页 |
| 4.3 靶基因载体构建 | 第45-47页 |
| 4.4 DNMT3A为miR-370的靶基因鉴定 | 第47-48页 |
| 4.5 miR-370调控DNMT3A的表达 | 第48-49页 |
| 4.5.1 miR-370对DNMT3A mRNA表达水平的影响 | 第48页 |
| 4.5.2 miR-370对DNMT3A蛋白表达水平的影响 | 第48-49页 |
| 4.6 讨论 | 第49-51页 |
| 4.7 本章小结 | 第51-52页 |
| 结论 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-64页 |
| 致谢 | 第64页 |
