摘要 | 第4-6页 |
ABSTRACT | 第6-7页 |
第1章 绪论 | 第11-30页 |
1.1 褐藻多糖硫酸酯提取 | 第11-12页 |
1.2 褐藻多糖硫酸酯的结构 | 第12-16页 |
1.3 褐藻多糖硫酸酯的生物活性 | 第16-22页 |
1.3.1 抗氧化活性 | 第16页 |
1.3.2 抗肿瘤活性 | 第16-17页 |
1.3.3 抗炎性 | 第17-18页 |
1.3.4 免疫调节活性 | 第18-19页 |
1.3.5 抗凝血活性 | 第19-20页 |
1.3.6 抗病毒活性 | 第20-21页 |
1.3.7 其他生物活性 | 第21-22页 |
1.4 褐藻多糖硫酸酯对肾脏损伤的保护作用 | 第22-28页 |
1.4.1 慢性肾脏损伤 | 第22-23页 |
1.4.2 急性肾脏损伤 | 第23-25页 |
1.4.3 肾脏纤维化 | 第25-26页 |
1.4.4 糖尿病肾病 | 第26-28页 |
1.4.5 肾结石 | 第28页 |
1.5 研究目的及意义 | 第28-29页 |
1.6 技术路线 | 第29-30页 |
第2章 LMWF及其分级组分制备及质量研究 | 第30-45页 |
2.1 引言 | 第30-31页 |
2.2 实验材料 | 第31页 |
2.3 实验方法 | 第31-33页 |
2.3.1 褐藻多糖硫酸酯(FPS)提取 | 第31-32页 |
2.3.2 纯化工艺研究 | 第32页 |
2.3.3 LMWF制备及其分级组分制备 | 第32-33页 |
2.3.4 化学分析方法 | 第33页 |
2.4 结果 | 第33-43页 |
2.4.1 提取工艺确定 | 第33-36页 |
2.4.2 降解工艺优化 | 第36-37页 |
2.4.3 质量分析 | 第37-39页 |
2.4.4 LMWF分级组分 | 第39-43页 |
2.5 讨论 | 第43-45页 |
第3章 LMWF分级组分对大鼠急性肾损伤的治疗作用 | 第45-57页 |
3.1 引言 | 第45页 |
3.2 实验材料 | 第45-46页 |
3.2.1 实验材料 | 第45-46页 |
3.3 实验方法 | 第46-47页 |
3.3.1 分级组分抗氧化活性 | 第46页 |
3.3.2 LMWF分级组分AKI肾脏保护作用研究 | 第46-47页 |
3.4 实验结果 | 第47-54页 |
3.4.1 分级组分的羟基自由基和超氧自由基清除活性 | 第47-49页 |
3.4.2 LMWF分级组分对AKI保护作用 | 第49-54页 |
3.5 讨论 | 第54-56页 |
3.6 小结 | 第56-57页 |
第4章 LMWF抑制HK-2 细胞纤维化的研究 | 第57-88页 |
4.1 引言 | 第57-58页 |
4.2 实验仪器与材料 | 第58-61页 |
4.2.1 实验仪器 | 第58-59页 |
4.2.2 实验材料 | 第59-61页 |
4.3 实验方法 | 第61-65页 |
4.3.1 细胞毒性实验 | 第61页 |
4.3.2 RNA表达 | 第61-64页 |
4.3.3 Western blotting | 第64-65页 |
4.4 结果 | 第65-82页 |
4.4.1 细胞毒性实验 | 第65-66页 |
4.4.2 形态学观察 | 第66-69页 |
4.4.3 RNA表达 | 第69-80页 |
4.4.4 Western blotting | 第80-82页 |
4.5 讨论 | 第82-86页 |
4.6 小结 | 第86-88页 |
第5章 FPS对高糖诱导NRK-52E细胞作用研究 | 第88-102页 |
5.1 引言 | 第88页 |
5.2 实验材料 | 第88-89页 |
5.2.1 实验仪器 | 第88-89页 |
5.2.2 实验材料 | 第89页 |
5.3 实验方法 | 第89-90页 |
5.3.1 细胞毒性实验 | 第89页 |
5.3.2 细胞处理时间 | 第89页 |
5.3.3 Western blotting | 第89-90页 |
5.4 结果 | 第90-97页 |
5.4.1 细胞毒性分析 | 第90页 |
5.4.2 药物培养时间 | 第90-93页 |
5.4.3 Western blotting | 第93-97页 |
5.5 讨论 | 第97-102页 |
第6章 结论与创新点 | 第102-104页 |
6.1 结论 | 第102-103页 |
6.2 创新点 | 第103-104页 |
参考文献 | 第104-118页 |
致谢 | 第118-119页 |
作者简历及攻读学位期间发表的学术论文与研究成果 | 第119页 |