| 摘要 | 第5-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 第一章 绪论 | 第13-39页 |
| 1.1 前言 | 第13页 |
| 1.2 荧光 | 第13-20页 |
| 1.2.1 单光子激发荧光（One-photon excited fluorescence） | 第14页 |
| 1.2.2 双光子激发荧光（Two-photon excited fluorescence） | 第14-15页 |
| 1.2.3 单光子激发荧光与双光子激发荧光的区别 | 第15页 |
| 1.2.4 荧光团 | 第15-20页 |
| 1.2.4.1 萘酰亚胺类荧光染料 | 第16-17页 |
| 1.2.4.2 罗丹明类荧光染料 | 第17-19页 |
| 1.2.4.3 吡喃腈类荧光染料 | 第19-20页 |
| 1.3 小分子荧光传感器的识别过程 | 第20-22页 |
| 1.4 基于化学反应的小分子荧光传感器的响应机理 | 第22-24页 |
| 1.4.1 分子内电荷转移（ICT）机理 | 第22-23页 |
| 1.4.2 荧光共振能量转移（FRET）机理 | 第23-24页 |
| 1.4.3 其他的响应机理 | 第24页 |
| 1.5 基于化学反应的小分子荧光传感器的应用 | 第24-37页 |
| 1.5.1 用于硫化氢（H2S）检测的小分子荧光传感器 | 第24-29页 |
| 1.5.1.1 基于还原叠氮基为氨基的荧光探针 | 第25-26页 |
| 1.5.1.2 基于还原硝基为氨基的荧光探针 | 第26-27页 |
| 1.5.1.3 基于亲核反应的荧光探针 | 第27-29页 |
| 1.5.2 用于一氧化氮（NO）检测的小分子荧光传感器 | 第29-31页 |
| 1.5.2.1 基于邻苯二胺和NO成环反应的荧光探针 | 第30页 |
| 1.5.2.2 基于NO诱导内酰胺环开环的荧光探针 | 第30-31页 |
| 1.5.2.3 基于金属络合物与NO反应的荧光探针 | 第31页 |
| 1.5.3 用于单胺氧化酶（MAOs）检测的小分子荧光传感器 | 第31-36页 |
| 1.5.3.1 基于酶促氧化反应后分子内环化反应的MAOs荧光探针 | 第32-33页 |
| 1.5.3.2 基于酶促氧化反应后β-消除反应的MAOs荧光探针 | 第33-34页 |
| 1.5.3.3 基于酶促氧化及β-消除反应后分子内缩合反应的MAOs荧光探针 | 第34-35页 |
| 1.5.3.4 基于酶促氧化反应后其它反应的MAOs荧光探针 | 第35-36页 |
| 1.5.4 用于γ-谷氨酰转肽酶（γ-GGT）检测的小分子荧光传感器 | 第36-37页 |
| 1.6 本课题的提出及研究内容 | 第37-39页 |
| 第二章 单胺氧化酶A（MAO-A）比率型荧光探针的设计、合成及其性能研究 | 第39-60页 |
| 2.1 引言 | 第39-40页 |
| 2.2 实验部分 | 第40-44页 |
| 2.2.1 Mito-NG荧光传感器的合成路线 | 第40-41页 |
| 2.2.2 原料与试剂 | 第41-42页 |
| 2.2.3 合成与制备 | 第42-44页 |
| 2.2.3.1 探针分子Mito-NG的合成 | 第42-43页 |
| 2.2.3.2 光谱实验 | 第43页 |
| 2.2.3.3 探针的选择性评估 | 第43-44页 |
| 2.2.4 仪器与测试 | 第44页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第44-59页 |
| 2.3.1 荧光探针Mito-NG及中间产物的合成与表征 | 第44-49页 |
| 2.3.1.1 ~1H NMR和MS分析 | 第44-49页 |
| 2.3.2 光谱性能研究 | 第49-59页 |
| 2.3.2.1 探针分子Mito-NG对MAO-A的光谱性质 | 第49-51页 |
| 2.3.2.2 探针分子Mito-NG对MAO-A的荧光响应 | 第51-53页 |
| 2.3.2.3 探针分子Mito-NG与MAO-A的反应动力学研究 | 第53页 |
| 2.3.2.4 探针分子Mito-NG对MAO-A的检测下限的确定 | 第53-54页 |
| 2.3.2.5 探针分子Mito-NG对MAO-A的选择性研究 | 第54-55页 |
| 2.3.2.6 探针分子Mito-NG对MAO-A的pH研究 | 第55-56页 |
| 2.3.2.7 探针分子Mito-NG对MAO-A的荧光响应机理 | 第56-59页 |
| 2.4 本章小结 | 第59-60页 |
| 第三章 对H_2S和NO具有不同荧光信号响应的单分子逻辑门荧光探针的设计、合成及其性能研究 | 第60-83页 |
| 3.1 引言 | 第60-61页 |
| 3.2 实验部分 | 第61-65页 |
| 3.2.1 Naph-Rh B荧光传感器的合成路线 | 第61页 |
| 3.2.2 原料与试剂 | 第61-62页 |
| 3.2.3 合成与制备 | 第62-64页 |
| 3.2.3.1 探针分子Naph-RHB的合成 | 第62-63页 |
| 3.2.3.2 H2S和NO测试的条件 | 第63-64页 |
| 3.2.3.3 探针的选择性评估 | 第64页 |
| 3.2.4 细胞毒性测试 | 第64页 |
| 3.2.5 荧光成像 | 第64页 |
| 3.2.6 测试仪器 | 第64-65页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第65-82页 |
| 3.3.1 单分子逻辑门荧光探针Naph-Rh B的设计 | 第65-67页 |
| 3.3.2 荧光探针Naph-Rh B及中间产物的合成与表征 | 第67-72页 |
| 3.3.2.11H NMR和MS分析 | 第68-72页 |
| 3.3.3 光谱性能研究 | 第72-80页 |
| 3.3.3.1 探针Naph-Rh B的光谱性能研究 | 第72-79页 |
| 3.3.3.2 探针Naph-Rh B的选择性研究 | 第79-80页 |
| 3.3.4 细胞成像研究 | 第80-82页 |
| 3.3.4.1 细胞毒性的考察 | 第80页 |
| 3.3.4.2 细胞成像 | 第80-82页 |
| 3.4 本章小结 | 第82-83页 |
| 第四章 新型双光子荧光探针的设计、合成及其对药物诱导肝损伤引起Γ-谷氨酰转肽酶（GGT）水平变化的研究 | 第83-117页 |
| 4.1 引言 | 第83-85页 |
| 4.2 实验部分 | 第85-91页 |
| 4.2.1 GGT荧光探针（DCM-GA）的合成路线 | 第85-86页 |
| 4.2.2 原料与试剂 | 第86页 |
| 4.2.3 合成与制备 | 第86-89页 |
| 4.2.3.1 GGT荧光探针（DCM-GA）的合成 | 第86-87页 |
| 4.2.3.2 光谱实验 | 第87-88页 |
| 4.2.3.3 探针的选择性评估 | 第88页 |
| 4.2.3.4 荧光量子产率的测定 | 第88页 |
| 4.2.3.5 双光子吸收界面常数的测定 | 第88-89页 |
| 4.2.3.6 γ-谷氨酰转肽酶（GGT）酶联免疫分析试剂盒检测 | 第89页 |
| 4.2.4 细胞毒性测试 | 第89页 |
| 4.2.5 单光子和双光子成像研究 | 第89-90页 |
| 4.2.5.1 单光子和双光子细胞成像研究 | 第89-90页 |
| 4.2.5.2 单光子和双光子斑马鱼成像研究 | 第90页 |
| 4.2.6 测试仪器 | 第90-91页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第91-116页 |
| 4.3.1 荧光探针DCM-GA及中间产物的合成与表征 | 第91-95页 |
| 4.3.1.1 ~1H NMR和MS分析 | 第91-95页 |
| 4.3.2 光谱性能研究 | 第95-104页 |
| 4.3.2.1 探针分子DCM-GA对GGT的光谱性质 | 第95-96页 |
| 4.3.2.2 探针分子DCM-GA对GGT的荧光响应 | 第96-97页 |
| 4.3.2.3 探针分子DCM-GA对GGT的检测下限的确定 | 第97-99页 |
| 4.3.2.4 探针分子DCM-GA对GGT的选择性研究 | 第99-100页 |
| 4.3.2.5 探针分子DCM-GA对GGT的p H及光稳定性研究 | 第100-101页 |
| 4.3.2.6 探针分子DCM-GA对GGT的荧光响应机理 | 第101-104页 |
| 4.3.3 人血清样品中GGT的检测 | 第104-107页 |
| 4.3.4 探针分子DCM-GA的双光子荧光性质 | 第107-108页 |
| 4.3.5 细胞毒性与细胞成像 | 第108-112页 |
| 4.3.5.1 探针分子DCM-GA的细胞毒性 | 第108-109页 |
| 4.3.5.2 探针分子DCM-GA的细胞成像 | 第109-112页 |
| 4.3.6 斑马鱼成像 | 第112-116页 |
| 4.3.6.1 探针分子DCM-GA对斑马鱼中内源性GGT的单光子和双光子荧光成像 | 第112-116页 |
| 4.4 本章小结 | 第116-117页 |
| 结论 | 第117-118页 |
| 参考文献 | 第118-142页 |
| 攻读博士学位期间取得的研究成果 | 第142-144页 |
| 致谢 | 第144-146页 |
| 附件 | 第146页 |
