| 致谢 | 第11-13页 |
| 摘要 | 第13-16页 |
| Abstract | 第16-18页 |
| 第一章 绪论 | 第19-26页 |
| 1.1 铜绿微囊藻及其危害 | 第19-20页 |
| 1.2 蓝藻水华的治理 | 第20-25页 |
| 1.2.1 化学治藻法 | 第20-22页 |
| 1.2.2 物理治藻法 | 第22页 |
| 1.2.3 生物治藻法 | 第22-25页 |
| 1.3 本研究的目的与意义 | 第25-26页 |
| 第二章 不同碳源诱导Citrobacter sp.R1溶藻活性差异原因的探索 | 第26-42页 |
| 2.1 实验材料 | 第26-29页 |
| 2.1.1 目标藻种与溶藻菌 | 第26页 |
| 2.1.2 培养基 | 第26-27页 |
| 2.1.3 主要试剂 | 第27页 |
| 2.1.4 主要仪器设备 | 第27-28页 |
| 2.1.5 主要引物序列 | 第28-29页 |
| 2.2 实验方法 | 第29-34页 |
| 2.2.1 两种不同碳源培养下Citrobacter sp.R1的溶藻特性 | 第29页 |
| 2.2.2 叶绿素a的提取及溶藻率计算 | 第29页 |
| 2.2.3 溶藻突变株的构建 | 第29-30页 |
| 2.2.4 突变株(TR1)的验证 | 第30页 |
| 2.2.5 溶藻基因的获取 | 第30-31页 |
| 2.2.6 TA克隆与转化 | 第31-32页 |
| 2.2.7 Real-time PCR法检测两种不同碳源培养下glgA基因相对表达量 | 第32-33页 |
| 2.2.8 SDS-PAGE凝胶电泳 | 第33-34页 |
| 2.3 实验结果 | 第34-41页 |
| 2.3.1 两种不同碳源培养下Citrobacter sp.R1的溶藻特性差异 | 第34-35页 |
| 2.3.2 两种不同碳源诱导细菌R1溶藻率差异原因的探索 | 第35-41页 |
| 2.4 分析与讨论 | 第41-42页 |
| 第三章 麸皮提高Alcaligenes aquatilis F8对铜绿微囊藻细胞毒性的研究 | 第42-56页 |
| 3.1 实验材料 | 第42页 |
| 3.1.1 目标藻种和溶藻菌 | 第42页 |
| 3.1.2 培养基 | 第42页 |
| 3.1.3 主要试剂 | 第42页 |
| 3.1.4 主要仪器设备 | 第42页 |
| 3.1.5 主要引物序列 | 第42页 |
| 3.2 实验方法 | 第42-46页 |
| 3.2.1 溶藻菌的培养、分离与鉴定 | 第42-44页 |
| 3.2.2 细菌F8的固定化与去固定化 | 第44页 |
| 3.2.3 溶藻活性的测定 | 第44-45页 |
| 3.2.4 麸皮中提高细菌F8溶藻活性的关键成分的推测 | 第45页 |
| 3.2.5 麸皮中提高细菌F8溶藻活性的关键成分的验证 | 第45-46页 |
| 3.2.6 统计分析 | 第46页 |
| 3.3 实验结果 | 第46-54页 |
| 3.3.1 细菌F8的筛选与鉴定 | 第46-47页 |
| 3.3.2 细菌F8的溶藻特性 | 第47-48页 |
| 3.3.3 麸皮提高固定化F8的溶藻活性 | 第48-50页 |
| 3.3.4 麸皮提高固定化F8溶藻活性机理的研究 | 第50-54页 |
| 3.4 分析与讨论 | 第54-56页 |
| 第四章 磁性纳米颗粒联合麸皮提高固定化Bacillus methylotrophicus ZJU对铜绿微囊藻细胞毒性的研究 | 第56-70页 |
| 4.1 实验材料 | 第56页 |
| 4.1.1 目标藻种和溶藻菌 | 第56页 |
| 4.1.2 培养基 | 第56页 |
| 4.1.3 主要试剂 | 第56页 |
| 4.1.4 主要仪器设备 | 第56页 |
| 4.1.5 主要引物序列 | 第56页 |
| 4.2 实验方法 | 第56-60页 |
| 4.2.1 溶藻菌的培养、分离与鉴定 | 第56-57页 |
| 4.2.2 Fe_3O_4纳米颗粒的制备 | 第57页 |
| 4.2.3 细菌ZJU的固定化及使用Fe_3O_4和麸皮改善细菌溶藻活性 | 第57页 |
| 4.2.4 Fe_3O_4和Fe_3O_4-coated固定化ZJU的磁性及其回收潜能的测定 | 第57-58页 |
| 4.2.5 溶藻实验 | 第58页 |
| 4.2.6 细菌ZJU对铜绿微囊藻的氧化损伤以及藻细胞的抗氧化应答 | 第58-59页 |
| 4.2.7 荧光染色及流式细胞仪分析 | 第59-60页 |
| 4.2.8 统计分析 | 第60页 |
| 4.3 实验结果 | 第60-68页 |
| 4.3.1 细菌ZJU的鉴定 | 第60-61页 |
| 4.3.2 游离以及固定化的细菌ZJU的溶藻活性 | 第61-62页 |
| 4.3.3 固定化细菌ZJU溶藻特性的改良 | 第62-63页 |
| 4.3.4 磁性特征以及其回收潜能的测定 | 第63-64页 |
| 4.3.5 细菌ZJU对铜绿微囊藻的溶藻效果 | 第64-67页 |
| 4.3.6 流式细胞仪检测藻细胞活力 | 第67-68页 |
| 4.4 讨论 | 第68-70页 |
| 第五章 制备复合絮凝剂用于治理铜绿微囊藻的研究 | 第70-82页 |
| 5.1 实验材料 | 第70页 |
| 5.1.1 目标藻种和溶藻菌 | 第70页 |
| 5.1.2 培养基 | 第70页 |
| 5.1.3 主要试剂 | 第70页 |
| 5.1.4 主要仪器设备 | 第70页 |
| 5.1.5 主要引物序列 | 第70页 |
| 5.2 实验方法 | 第70-73页 |
| 5.2.1 微生物絮凝剂产生菌的培养、分离与鉴定 | 第70-71页 |
| 5.2.2 分离并纯化微生物絮凝剂EPS | 第71页 |
| 5.2.3 絮凝活性的测定 | 第71-72页 |
| 5.2.4 EPS特性研究 | 第72页 |
| 5.2.5 RSM实验设计 | 第72-73页 |
| 5.2.6 统计学分析 | 第73页 |
| 5.3 实验结果 | 第73-80页 |
| 5.3.1 细菌ZJU1的鉴定及其絮凝特性的测定 | 第73-74页 |
| 5.3.2 EPS的特性分析 | 第74-77页 |
| 5.3.3 RSM设计优化复合絮凝剂组成 | 第77-78页 |
| 5.3.4 复合絮凝剂絮凝特性的测定 | 第78-80页 |
| 5.4 分析与讨论 | 第80-82页 |
| 第六章 一种新型微生物絮凝剂去除铜绿微囊藻的研究 | 第82-97页 |
| 6.1 实验材料 | 第82页 |
| 6.1.1 目标藻种和溶藻菌 | 第82页 |
| 6.1.2 培养基 | 第82页 |
| 6.1.3 主要试剂 | 第82页 |
| 6.1.4 主要仪器设备 | 第82页 |
| 6.1.5 主要引物序列 | 第82页 |
| 6.2 实验方法 | 第82-85页 |
| 6.2.1 微生物絮凝剂产生菌的分离与鉴定 | 第83页 |
| 6.2.2 微生物絮凝剂EPS的分离与纯化 | 第83页 |
| 6.2.3 絮凝活性的测定 | 第83页 |
| 6.2.4 EPS-1特性研究 | 第83-84页 |
| 6.2.5 SDS-PAGE实验 | 第84页 |
| 6.2.6 EPS-1中蛋白组分对其絮凝活性贡献率的探索 | 第84-85页 |
| 6.2.7 优化EPS-1对高岭土及M. aeruginosa的絮凝参数 | 第85页 |
| 6.2.8 最优条件下EPS-1对高岭土及M. aeruginosa絮凝效率的测定 | 第85页 |
| 6.2.9 统计学分析 | 第85页 |
| 6.3 实验结果 | 第85-95页 |
| 6.3.1 细菌DT的分离与鉴定 | 第86-87页 |
| 6.3.2 EPS-1特性研究 | 第87-92页 |
| 6.3.3 EPS-1絮凝去除高岭土及M. aeruginosa参数的优化 | 第92-93页 |
| 6.3.4 EPS-1对高岭土及M. aeruginosa的最优絮凝特性 | 第93-94页 |
| 6.3.5 EPS-1对高岭土及M. aeruginosa的絮凝机制 | 第94-95页 |
| 6.4 讨论 | 第95-97页 |
| 第七章 总结与展望 | 第97-101页 |
| 7.1 主要结论 | 第97-99页 |
| 7.2 主要创新点 | 第99页 |
| 7.3 展望与不足 | 第99-101页 |
| 参考文献 | 第101-113页 |
| 附录1 | 第113-114页 |
| 附录2 | 第114-115页 |
| 附录3 | 第115-116页 |
| 攻读学位期间发表论文与专利 | 第116-117页 |
