| 中文摘要 | 第6-8页 |
| ABSTRACT | 第8-10页 |
| 英文缩略词表 | 第11-12页 |
| 1 前言 | 第12-16页 |
| 2 实验材料 | 第16-17页 |
| 2.1 实验动物 | 第16页 |
| 2.2 实验试剂 | 第16页 |
| 2.2.1 制备RA动物模型主要试剂 | 第16页 |
| 2.2.2 PDT实验主要试剂及药物 | 第16页 |
| 2.3 主要仪器与设备 | 第16-17页 |
| 3 实验方法 | 第17-22页 |
| 3.1 RA动物模型的制备 | 第17-18页 |
| 3.1.1 胶原乳化剂的制备 | 第17页 |
| 3.1.2 模型免疫方法 | 第17-18页 |
| 3.2 实验试剂配制 | 第18-19页 |
| 3.3 分组及给药方案 | 第19页 |
| 3.4 CIA模型小鼠一般情况观察评价 | 第19-22页 |
| 3.4.1 体重、毛色、摄食 | 第19页 |
| 3.4.2 关节肿胀程度测量 | 第19页 |
| 3.4.3 关节炎指数评分 | 第19-20页 |
| 3.4.4 HE染色观察对CIA小鼠踝关节病理学改变的影响 | 第20-21页 |
| 3.4.5 酶联免疫吸附法 | 第21-22页 |
| 4 统计学处理 | 第22页 |
| 5 结果 | 第22-31页 |
| 5.1 CIA小鼠模型的建立结果 | 第22页 |
| 5.2 金丝桃素对小鼠类风湿关节炎的治疗作用 | 第22-31页 |
| 5.2.1 HY-PDT对CIA小鼠一般情况的影响 | 第22-24页 |
| 5.2.2 HY-PDT对CIA小鼠体重增长的影响 | 第24页 |
| 5.2.3 HY-PDT对CIA小鼠后足厚度的改善作用 | 第24-26页 |
| 5.2.4 HY-PDT对CIA小鼠关节炎指数的改善作用 | 第26-27页 |
| 5.2.5 HY-PDT对CIA小鼠后足踝关节组织病理学变化的改善作用 | 第27-29页 |
| 5.2.6 HY-PDT对CIA小鼠血清TNF-α及IL-1β水平的影响 | 第29-31页 |
| 6 讨论 | 第31-36页 |
| 6.1 RA动物模型的选择 | 第31-32页 |
| 6.2 TNF-α、IL-1β等细胞因子在RA发病中起着关键作用 | 第32页 |
| 6.3 中医对类风湿性关节炎的认识及治则 | 第32-33页 |
| 6.4 西医学对类风湿性关节炎的治疗现状 | 第33-35页 |
| 6.5 HY-PDT治疗机制 | 第35-36页 |
| 7 总结 | 第36-37页 |
| 8 不足与展望 | 第37页 |
| 8.1 不足 | 第37页 |
| 8.2 展望 | 第37页 |
| 参考文献 | 第37-42页 |
| 综述 类风湿关节炎的治疗研究进展 | 第42-49页 |
| 参考文献 | 第46-49页 |
| 个人简介 | 第49页 |
| 发表论文目录 | 第49-50页 |
| 致谢 | 第50页 |
