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粗糙脉孢菌蛋白表达系统构建研究

摘要第4-5页
ABSTRACT第5页
1 前言第8-18页
    1.1 丝状真菌蛋白表达系统的研究现状第8-14页
        1.1.1 丝状真菌在表达重组蛋白中的应用第8-9页
        1.1.2 影响丝状真菌重组蛋白表达的因素第9-11页
        1.1.3 提高丝状真菌蛋白表达和分泌的策略第11-14页
    1.2 粗糙脉孢菌第14-16页
        1.2.1 粗糙脉孢菌的概述第14-15页
        1.2.2 粗糙脉孢菌蛋白表达系统的研究现状第15-16页
    1.3 课题立项依据及目的意义第16-17页
        1.3.1 课题立项依据第16-17页
        1.3.2 研究意义第17页
    1.4 研究内容第17-18页
2 材料与方法第18-33页
    2.1 实验材料第18-21页
        2.1.1 实验仪器第18-19页
        2.1.2 实验试剂第19-20页
        2.1.3 实验用菌株、质粒和引物第20-21页
    2.2 常用培养基和缓冲液的配制第21-24页
        2.2.1 常用缓冲液的配制第22-24页
        2.2.2 常用培养基的配制第24页
    2.3 实验方法第24-33页
        2.3.1 PCR扩增第24-25页
        2.3.2 PCR产物纯化(QIAGEN纯化试剂盒)第25-26页
        2.3.3 琼脂糖凝胶回收DNA片段(试剂盒)第26页
        2.3.4 限制性内切酶酶切第26-27页
        2.3.5 片段和载体连接第27页
        2.3.6 E.coli Top 10感受态细胞转化第27页
        2.3.7 大肠杆菌质粒提取(质粒小提试剂盒)第27-28页
        2.3.8 分生孢子的制备第28页
        2.3.9 N.crassa电击转化第28页
        2.3.10 N.crassa基因组提取第28-29页
        2.3.11 真菌杂交构建表达宿主菌株第29页
        2.3.12 重组蛋白诱导表达和蛋白浓度测定第29页
        2.3.13 酶活测定第29-30页
        2.3.14 SDS-PAGE蛋白电泳第30页
        2.3.15 Western Blotting实验流程第30-31页
        2.3.16 重组蛋白的分离纯化第31-32页
        2.3.17 酶特性分析第32-33页
3 结果与讨论第33-55页
    3.1 表达载体的构建第33-38页
        3.1.1 构建质粒pccg1-THG第33页
        3.1.2 选择强启动子第33-35页
        3.1.3 选择高表达的目的基因第35-38页
    3.2 表达宿主菌的构建第38-44页
        3.2.1 3ΔβG表型验证第38-40页
        3.2.2 3ΔβG和Δ2cbhΔhis3进行杂交第40-42页
        3.2.3 表达宿主菌表型分析第42-44页
    3.3 N.crassa阳性转化子的筛选第44-46页
        3.3.1 组氨酸缺陷型为筛选标记第44页
        3.3.2 绿色荧光蛋白(GFP)筛选第44-46页
    3.4 重组蛋白GH3-4和CBH-1的表达和纯化第46-49页
        3.4.1 重组蛋白GH3-4和CBH-1的表达第46-48页
        3.4.2 重组蛋白GH3-4和CBH-1的分离纯化第48-49页
    3.5 重组蛋白GH3-4和CBH-1的酶特性分析第49-52页
        3.5.1 温度和酸碱度对酶活力的影响第49-50页
        3.5.2 酸碱度和热稳定性对酶活力的影响第50-51页
        3.5.3 底物专一性对酶活力的影响第51页
        3.5.4 金属离子和螯合剂对酶活力的影响第51-52页
    3.6 讨论第52-55页
4 结论第55-57页
5 展望第57-58页
6 参考文献第58-65页
7 攻读硕士学位期间发表论文情况第65-66页
8 致谢第66页

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