| 摘要 | 第1-9页 |
| ABSTRACT | 第9-12页 |
| 缩略词表 | 第12-14页 |
| 第一章 文献综述 | 第14-28页 |
| 第一节 盐和干旱胁迫信号途径的研究进展 | 第14-22页 |
| 1 依赖于ABA的信号转导途径 | 第14-17页 |
| 2 非依赖ABA的信号转导途径 | 第17-22页 |
| 第二节 气体信号分子的研究进展 | 第22-28页 |
| 1 NO对植物生长发育的调节及与其他信号分子的相互作用关系 | 第22-24页 |
| 2 HO/CO系统调控植物生理功能的机理 | 第24-25页 |
| 3 氢气生物学功能的研究进展 | 第25-28页 |
| 第二章 HY1与依赖于NR/NOA1产生的NO增强拟南芥耐盐性的分子机理 | 第28-54页 |
| 摘要 | 第28-29页 |
| 引言 | 第29-31页 |
| 第一节 材料与方法 | 第31-34页 |
| 1 试剂 | 第31页 |
| 2 植物材料与培养 | 第31页 |
| 3 nia1/2/noa1和nia1/2/noa1/hy1-100突变体的筛选和鉴定 | 第31-32页 |
| 4 盐胁迫实验和表型分析 | 第32页 |
| 5 定量RT-PCR检测 | 第32页 |
| 6 利用LSCM分析NO含量 | 第32页 |
| 7 电子顺磁共振(EPR)检测NO含量 | 第32-33页 |
| 8 统计分析 | 第33-34页 |
| 第二节 结果与分析 | 第34-49页 |
| 1 依赖于NR/NOA1产生的NO介导拟南芥的耐盐性 | 第34-37页 |
| 2 nia1/2/noa1突变体HY1的表达以及抗氧化基因对短期或长期盐处理的响应 | 第37-39页 |
| 3 CO预处理缓解nia1/2/noa1对NaCl的超敏现象 | 第39-42页 |
| 4 NO引起HY1突变体及过表达材料的表型差异 | 第42-44页 |
| 5 短期或长期盐处理下hy1突变体抗氧化基因的表达变化 | 第44-46页 |
| 6 NO和CO预处理均缓解nia1/2/noa1/hy1-100突变体对NaCl的超敏现象 | 第46-48页 |
| 7 nia1/2/noa1/hy1-100突变体抗氧化基因的分析 | 第48-49页 |
| 第三节 讨论 | 第49-54页 |
| 1 hy1-100、nia1/2/noa1和nia1/2/noa1/hy1-100突变体对盐敏感性呈递增趋势 | 第49-50页 |
| 2 HY1与依赖于NR/NOA1产生的NO之间存在“对话”机制 | 第50-51页 |
| 3 NR/NOA1途径产生的NO和HY1介导耐盐信号途径的作用机理 | 第51-54页 |
| 第三章 H_2通过调节ZAT10/12介导的抗氧化防护以及Na~+外流增强拟南芥耐盐性 | 第54-72页 |
| 摘要 | 第54-55页 |
| 引言 | 第55-56页 |
| 第一节 材料和方法 | 第56-59页 |
| 1 植物材料和生长条件 | 第56页 |
| 2 H_2饱和溶液的制备 | 第56页 |
| 3 气相色谱检测内源氢气含量 | 第56页 |
| 4 盐胁迫处理和耐盐表型分析 | 第56页 |
| 5 测定硫代巴比妥酸反应物(TBARS)的含量 | 第56-57页 |
| 6 H_2O_2和O_2~(·-)的组织化学染色 | 第57页 |
| 7 定量RT-PCR检测 | 第57页 |
| 8 APX酶活性测定 | 第57页 |
| 9 APX和H~+-ATP酶的蛋白印记分析 | 第57-58页 |
| 10 离子含量测定 | 第58页 |
| 11 数据分析 | 第58-59页 |
| 第二节 结果与分析 | 第59-69页 |
| 1 H_2缓解盐胁迫对拟南芥幼苗生长的抑制 | 第59-61页 |
| 2 HRW预处理缓解脂质过氧化和维持ROS稳态 | 第61-63页 |
| 3 HRW对抗氧化防护系统的调节 | 第63-65页 |
| 4 离子稳态的重建 | 第65-69页 |
| 第三节 讨论 | 第69-72页 |
| 第四章 依赖于活性氧产生的NO介导H_2促进拟南芥气孔关闭和耐旱的分子机理 | 第72-102页 |
| 摘要 | 第72-73页 |
| 引言 | 第73-75页 |
| 第一节 材料与方法 | 第75-78页 |
| 1 植物材料与培养 | 第75页 |
| 2 富氢水(HRW)的制备 | 第75页 |
| 3 试剂 | 第75页 |
| 4 内源H_2含量的测定方法 | 第75-76页 |
| 5 气孔表型分析 | 第76页 |
| 6 LSCM分析NO和ROS含量 | 第76页 |
| 7 电子顺磁共振(EPR)检测NO含量 | 第76页 |
| 8 定量RT-PCR检测 | 第76页 |
| 9 失水率和存活率分析 | 第76-77页 |
| 10 统计分析 | 第77-78页 |
| 第二节 结果与分析 | 第78-97页 |
| 1 ABA快速诱导拟南芥内源H_2产生 | 第78-79页 |
| 2 HRW诱导气孔关闭以提高植物耐旱性 | 第79-82页 |
| 3 HRW诱导保卫细胞内NO的合成 | 第82-85页 |
| 4 依赖于NR产生的NO介导HRW诱导气孔关闭 | 第85-88页 |
| 5 ROS参与HRW诱导气孔关闭过程 | 第88-90页 |
| 6 依赖于RbohF产生的ROS介导HRW诱导气孔关闭 | 第90-92页 |
| 7 HRW诱导NO生成和气孔关闭依赖于ROS的合成 | 第92-95页 |
| 8 GORK作为HRW下游元件介导气孔关闭 | 第95-97页 |
| 第三节 讨论 | 第97-102页 |
| 1 氢气参与调节气孔运动和提高植物耐旱性 | 第97-98页 |
| 2 NR途径产生的NO与依赖于Rboh生成的ROS在H_2信号途径中的相互关系 | 第98-102页 |
| 全文结论 | 第102-104页 |
| 参考文献 | 第104-120页 |
| 附表1 | 第120-121页 |
| 附表2 | 第121-124页 |
| 附图1 | 第124-125页 |
| 附图2 | 第125-126页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第126-128页 |
| 致谢 | 第128页 |
