| 摘要 | 第1-8页 |
| ABSTRACT | 第8-19页 |
| 第1章 绪论 | 第19-42页 |
| ·应激 | 第19-20页 |
| ·应激的概念 | 第19-20页 |
| ·应激的生物学作用 | 第20页 |
| ·产前应激 | 第20-29页 |
| ·产前应激与海马 | 第21-23页 |
| ·产前应激与纹状体 | 第23-24页 |
| ·产前应激与前额叶皮层 | 第24-25页 |
| ·产前应激的作用机制 | 第25-27页 |
| ·对子代大鼠胎儿编程的影响 | 第27-29页 |
| ·情感性精神障碍 | 第29-33页 |
| ·情感性精神障碍的脑形态学概述 | 第29页 |
| ·情感性精神障碍的临床表现概述 | 第29-30页 |
| ·产前应激与子代情感性精神障碍 | 第30-31页 |
| ·产前应激与子代情感性精神障碍的性别差异 | 第31-32页 |
| ·情感性精神障碍病因学与发病机制 | 第32-33页 |
| ·亲代谢型谷氨酸受体(mGluRs) | 第33-38页 |
| ·mGluR Ⅰ在突触可塑性中的作用 | 第34-35页 |
| ·mGluR Ⅰ在神经发生中的作用 | 第35-36页 |
| ·mGluR Ⅰ在兴奋性毒性中的作用 | 第36-38页 |
| ·脑源性神经营养因子(BDNF) | 第38-42页 |
| 第2章 产前应激对子代大鼠抑郁样行为的影响 | 第42-47页 |
| ·实验材料 | 第42页 |
| ·实验主要仪器 | 第42页 |
| ·实验方法 | 第42-43页 |
| ·动物分组 | 第42-43页 |
| ·模型建立 | 第43页 |
| ·强迫游泳实验(FST) | 第43页 |
| ·统计学分析 | 第43页 |
| ·结果 | 第43-45页 |
| ·讨论 | 第45-47页 |
| 第3章 产前应激对子代大鼠脑区亲代谢型谷氨酸受体1、亲代谢型谷氨酸受体5表达的影响 | 第47-68页 |
| ·实验材料 | 第47-52页 |
| ·实验主要仪器和试剂 | 第47-49页 |
| ·溶液配制 | 第49-52页 |
| ·实验方法 | 第52-57页 |
| ·动物分组 | 第52页 |
| ·模型建立 | 第52-53页 |
| ·取材 | 第53页 |
| ·制备蛋白质样品 | 第53页 |
| ·制备凝胶(现用现配) | 第53-54页 |
| ·灌制凝胶 | 第54页 |
| ·制备蛋白样品 | 第54页 |
| ·加样品 | 第54-55页 |
| ·电泳 | 第55页 |
| ·转印 | 第55页 |
| ·凝胶染色 | 第55-56页 |
| ·PVDF膜染色 | 第56页 |
| ·免疫检测 | 第56-57页 |
| ·内标定量 | 第57页 |
| ·统计学分析 | 第57-58页 |
| ·结果 | 第58-65页 |
| ·各组子代大鼠mGluR1表达量 | 第58-61页 |
| ·各组子代大鼠mGluR5表达量 | 第61-65页 |
| ·讨论 | 第65-68页 |
| 第4章 产前应激对子代大鼠脑区脑源性神经营养因子基因表达的影响 | 第68-82页 |
| ·实验材料 | 第68-71页 |
| ·实验主要仪器和试剂 | 第68-70页 |
| ·引物序列表 | 第70页 |
| ·溶液配制 | 第70-71页 |
| ·实验方法 | 第71页 |
| ·动物分组 | 第71页 |
| ·模型建立 | 第71页 |
| ·取材 | 第71页 |
| ·总RNA提取及其完整性验证 | 第71-73页 |
| ·操作环境及要求(防RNA酶污染) | 第71-72页 |
| ·组织总RNA的提取 | 第72页 |
| ·RNA纯度、浓度以及完整性测定 | 第72-73页 |
| ·PT-PCR反应过程 | 第73-76页 |
| ·反转录反应 | 第73-74页 |
| ·反转录反应 | 第74-75页 |
| ·琼脂糖凝胶电泳检测 | 第75-76页 |
| ·统计学分析 | 第76页 |
| ·结果 | 第76-79页 |
| ·讨论 | 第79-82页 |
| 第5章 结论 | 第82-83页 |
| 第6章 致谢 | 第83-84页 |
| 参考文献 | 第84-96页 |