| 本文主要缩写词表 | 第1-5页 |
| 中文摘要 | 第5-7页 |
| 英文摘要 | 第7-11页 |
| 第一章 前言 | 第11-19页 |
| 1 文献综述 | 第11-17页 |
| ·植物转导技术的研究进展 | 第11-16页 |
| ·基因枪转导法 | 第11-14页 |
| ·农杆菌介导法 | 第14-15页 |
| ·花粉管通道法 | 第15页 |
| ·其它转导方法 | 第15-16页 |
| ·水稻遗传转导技术的应用进展 | 第16-17页 |
| 2 研究的目的和意义 | 第17-19页 |
| 第二章 cyclAt基因导入水稻的研究 | 第19-35页 |
| 1 材料与方法 | 第19-27页 |
| ·实验材料 | 第19-21页 |
| ·受体水稻 | 第19页 |
| ·供体质粒 | 第19-20页 |
| ·主要试剂和仪器 | 第20页 |
| ·培养基 | 第20-21页 |
| ·实验方法 | 第21-27页 |
| ·籼、粳水稻亚种再生体系的建立 | 第21页 |
| ·基因枪法介导籼、粳水稻亚种遗传转导体系的建面图立 | 第21-24页 |
| ·GUS检测 | 第24-25页 |
| ·转基因水稻基因组DNA的提取和cyclAt的PCR检测 | 第25页 |
| ·Southern杂交 | 第25-27页 |
| 2.结果与分析 | 第27-31页 |
| ·籼、粳稻愈伤组织诱导和分化的差异比较 | 第27页 |
| ·籼、粳稻愈伤组织转导效率的差异比较 | 第27-28页 |
| ·GUS在愈伤组织和转基因植株叶片中的表达 | 第28-30页 |
| ·cyclAt在转基因水稻植株基因组DNA中的整合 | 第30页 |
| ·转基因植株中cyclAt基因的检测 | 第30-31页 |
| 3.讨论 | 第31-35页 |
| ·影响水稻胚性愈伤组织形成的因素 | 第31-33页 |
| ·受体材料的基因型 | 第31-32页 |
| ·2，4-D、外植体对愈伤组织诱导的影响 | 第32-33页 |
| ·不同外源基因协同导入水稻后的表达差异 | 第33-35页 |
| 第三章 转IPT基因水稻的基因重组分析及其生物学性状 | 第35-45页 |
| 1 实验材料和方法 | 第37-40页 |
| ·材料和试剂、仪器 | 第37-38页 |
| ·植物材料 | 第37页 |
| ·试剂与仪器 | 第37-38页 |
| ·实验方法 | 第38-40页 |
| ·转IPT基因水稻基因组DNA的提取 | 第38页 |
| ·PCR检测反应 | 第38-39页 |
| ·Southern杂交 | 第39-40页 |
| ·转IPT基因水稻T_1代的农艺性状 | 第40页 |
| 2 结果与分析 | 第40-43页 |
| ·转基因水稻DNA的提取与分析 | 第40-41页 |
| ·转IPT基因水稻基因组中外源基因的检测 | 第41-42页 |
| ·转IPT基因水稻T_1代生物学性状 | 第42-43页 |
| 3.讨论 | 第43-45页 |
| ·IPT基因在转基因水稻中的表现 | 第43-44页 |
| ·转IPT基因水稻T_1代植株生物学和农艺性状上的差异 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-53页 |
| 附表 | 第53-56页 |
| 致谢 | 第56-57页 |
| 湖南师范大学学位论文原创性声明 | 第57页 |
| 湖南师范大学学位论文版权使用授权书 | 第57页 |
