| 前言 | 第1-10页 |
| 第一章 文献综述 | 第10-21页 |
| 1．1 血管内皮细胞 | 第10-12页 |
| 1．1．1 血管舒张因子 | 第10-11页 |
| 1．1．2 内皮素 | 第11页 |
| 1．1．3 血管紧张素 | 第11页 |
| 1．1．4 细胞黏附分子 | 第11-12页 |
| 1．1．5 其他因子 | 第12页 |
| 1．2 活性氧 | 第12-14页 |
| 1．2．1 活性氧的产生 | 第12-13页 |
| 1．2．2 活性氧的消除 | 第13-14页 |
| 1．2．2．1 活性氧清除的酶促体系 | 第13-14页 |
| 1．2．2．2 活性氧清除的非酶体系 | 第14页 |
| 1．3 活性氧的信号通路 | 第14-17页 |
| 1．3．1 MAPK 路径 | 第15-16页 |
| 1．3．2 蛋白激酶C的磷酸化 | 第16页 |
| 1．3．3 转录因子途径 | 第16-17页 |
| 1．4 复方丹参滴丸的研究现状 | 第17-19页 |
| 1．4．1 丹参及丹酚酸B | 第17-18页 |
| 1．4．1．1 防治动脉粥样硬化 | 第17-18页 |
| 1．4．1．2 保护心肌作用 | 第18页 |
| 1．4．1．3 诱导细胞凋亡 | 第18页 |
| 1．4．1．4 抗肝损伤、肝纤维化作用 | 第18页 |
| 1．4．1．5 其他功能 | 第18页 |
| 1．4．2 三七 | 第18-19页 |
| 1．4．3 冰片 | 第19页 |
| 1．4．4 复方丹参滴丸 | 第19页 |
| 1．5 本文的研究意义和主要研究内容 | 第19-21页 |
| 1．5．1 研究意义 | 第20页 |
| 1．5．2 研究内容 | 第20-21页 |
| 第二章 复方丹参的体外化学抗氧化活性 | 第21-33页 |
| 2．1 实验材料与方法 | 第21-24页 |
| 2．1．1 实验药品和试剂 | 第21页 |
| 2．1．2 实验器材 | 第21页 |
| 2．1．3 实验设计 | 第21-23页 |
| 2．1．3．1 药物清除DPPH 自由基能力的检测 | 第21-22页 |
| 2．1．3．2 药物清除超氧阴离子能力的检测 | 第22页 |
| 2．1．3．3 药物抑制羟基自由基产生能力的检测 | 第22-23页 |
| 2．1．3．4 药物螯合亚铁离子能力的检测 | 第23页 |
| 2．1．3．5 药物还原力的检测 | 第23页 |
| 2．1．3．6 药物清除过氧化氢能力检测 | 第23页 |
| 2．1．4 数据处理 | 第23-24页 |
| 2．2 结果与讨论 | 第24-31页 |
| 2．2．1 药物对 DPPH 自由基的消除作用 | 第24-25页 |
| 2．2．2 药物对超氧阴离子的清除作用 | 第25-26页 |
| 2．2．3 药物消除羟基自由基产生的能力 | 第26-27页 |
| 2．2．4 药物对亚铁离子的螯合作用 | 第27-28页 |
| 2．2．5 药物的还原力 | 第28-29页 |
| 2．2．6 药物对过氧化氢的消除能力 | 第29-31页 |
| 2．3 小节 | 第31-33页 |
| 第三章 复方丹参对氧化损伤的血管内皮细胞活力的保护效应 | 第33-40页 |
| 3．1 实验材料与方法 | 第33-35页 |
| 3．1．1 实验药品和试剂 | 第33页 |
| 3．1．2 实验器材 | 第33页 |
| 3．1．3 实验设计 | 第33-35页 |
| 3．1．3．1 细胞培养 | 第34页 |
| 3．1．3．2 药物处理 | 第34页 |
| 3．1．3．3 细胞活力检测 | 第34-35页 |
| 3．1．4 数据处理 | 第35页 |
| 3．2 结果与讨论 | 第35-39页 |
| 3．2．1 不同浓度 H_2O_2损伤对细胞活力的影响 | 第35页 |
| 3．2．2 丹参提取物对 H_2O_2损伤的细胞的保护作用 | 第35-36页 |
| 3．2．3 三七提取物对 H_2O_2损伤的细胞的保护作用 | 第36-37页 |
| 3．2．4 复方丹参对 H_2O_2损伤的细胞的保护作用 | 第37页 |
| 3．2．5 丹参素对 H_2O_2损伤的细胞的保护作用 | 第37-38页 |
| 3．2．6 丹酚酸 B 对 H_2O_2损伤的细胞的保护作用 | 第38-39页 |
| 3．3 小结 | 第39-40页 |
| 第四章 丹酚酸B 对内皮细胞内氧化还原体系的影响 | 第40-47页 |
| 4．1 实验材料与方法 | 第40-43页 |
| 4．1．1 实验药品和试剂 | 第40页 |
| 4．1．2 实验器材 | 第40页 |
| 4．1．3 实验设计 | 第40-43页 |
| 4．1．3．1 细胞培养 | 第40页 |
| 4．1．3．2 药物处理 | 第40-41页 |
| 4．1．3．3 总蛋白的提取 | 第41页 |
| 4．1．3．4 蛋白质浓度的测定及标准曲线的绘制 | 第41-42页 |
| 4．1．3．5 细胞内 ROS 的检测 | 第42页 |
| 4．1．3．6 超氧化物歧化酶(SOD)活性的测定 | 第42页 |
| 4．1．3．7 过氧化氢酶(CAT)活性的测定 | 第42-43页 |
| 4．1．3．8 谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-PX)的测定 | 第43页 |
| 4．1．4 数据处理 | 第43页 |
| 4．2 结果与讨论 | 第43-46页 |
| 4．2．1 丹酚酸 B 对 H_2O_2损伤的细胞内 ROS 的影响 | 第43页 |
| 4．2．2 丹酚酸 B 对 H_2O_2损伤的细胞内 SOD 活力的影响 | 第43-44页 |
| 4．2．3 丹酚酸 B 对 H_2O_2损伤的细胞内 CAT 活力的影响 | 第44-45页 |
| 4．2．4 丹酚酸 B 对 H_2O_2损伤的细胞内 GPX 活力的影响 | 第45-46页 |
| 4．3 小结 | 第46-47页 |
| 第五章 丹酚酸 B 抗氧化的细胞内信号机理 | 第47-57页 |
| 5．1 实验材料与方法 | 第47-49页 |
| 5．1．1 实验药品和试剂 | 第47页 |
| 5．1．2 实验器材 | 第47页 |
| 5．1．3 实验设计 | 第47-49页 |
| 5．1．3．1 细胞培养 | 第47-48页 |
| 5．1．3．2 药物处理 | 第48页 |
| 5．1．3．3 总蛋白的提取 | 第48页 |
| 5．1．3．4 核蛋白的提取 | 第48页 |
| 5．1．3．5 Western 杂交 | 第48-49页 |
| 5．2 结果与讨论 | 第49-56页 |
| 5．2．1 丹酚酸 B 对 H_2O_2损伤的细胞内 ERK 活化的影响 | 第49-50页 |
| 5．2．2 丹酚酸 B 对 H_2O_2损伤的细胞内 JNK 活化的影响 | 第50-51页 |
| 5．2．3 丹酚酸 B 对 H_2O_2 损伤的细胞内 P38 活化的影响 | 第51-53页 |
| 5．2．4 丹酚酸 B 对 H_2O_2 损伤的细胞内 PKCα活化的影响 | 第53-54页 |
| 5．2．5 丹酚酸 B 对 H_2O_2 损伤的细胞核内 NF-iκBp65 活化的影响 | 第54-55页 |
| 5．2．6 丹酚酸 B 对 H_2O_2 损伤的细胞黏附分子 ICAM-1 分泌的影响 | 第55-56页 |
| 5．3 小结 | 第56-57页 |
| 第六章 结论与展望 | 第57-59页 |
| 6．1 结论 | 第57页 |
| 6．2 展望 | 第57-59页 |
| 参考文献 | 第59-68页 |
| 发表论文和参加科研情况 | 第68-69页 |
| 致谢 | 第69页 |
