| 摘要 | 第1-4页 |
| Abstract | 第4-10页 |
| 1 引言 | 第10-21页 |
| ·双歧杆菌的研究进展 | 第10-16页 |
| ·双歧杆菌的种类、数量及分布 | 第10页 |
| ·双歧杆菌的生物学特性 | 第10-11页 |
| ·双歧杆菌对人体的生理功能 | 第11-16页 |
| ·细菌细胞壁肽聚糖的研究进展 | 第16-19页 |
| ·肽聚糖的组成与结构 | 第17页 |
| ·肽聚糖的分类 | 第17-18页 |
| ·肽聚糖的合成 | 第18页 |
| ·肽聚糖的代谢 | 第18页 |
| ·肽聚糖的免疫作用机制 | 第18-19页 |
| ·双歧杆菌完整肽聚糖的分离纯化、免疫调节及抑瘤作用的研究现状 | 第19-20页 |
| ·WPG 的分离纯化 | 第19页 |
| ·WPG 的免疫调节作用 | 第19-20页 |
| ·WPG 的抑瘤作用 | 第20页 |
| ·本研究的目的意义及研究内容 | 第20-21页 |
| 2 材料和方法 | 第21-29页 |
| ·材料 | 第21-23页 |
| ·菌种及主要试剂 | 第21页 |
| ·细胞株及单个核淋巴细胞来源 | 第21-22页 |
| ·主要仪器 | 第22页 |
| ·主要溶液配制 | 第22-23页 |
| ·方法 | 第23-29页 |
| ·长双歧杆菌完整肽聚糖的工业化分离方法的研究 | 第23-26页 |
| ·长双歧杆菌 WPG 的初步鉴定及相关分析 | 第26-28页 |
| ·长双歧杆菌完整肽聚糖免疫活性的研究 | 第28页 |
| ·长双歧杆菌完整肽聚糖体外抑瘤活性的研究 | 第28-29页 |
| 3 结果与分析 | 第29-43页 |
| ·长双歧杆菌完整肽聚糖的工业化分离方法的研究 | 第29-34页 |
| ·活菌计数结果及WPG 制备得率 | 第29-30页 |
| ·磷壁酸去除方法的选择 | 第30-31页 |
| ·TCA 法去除磷壁酸温度及时间条件的优化 | 第31-33页 |
| ·脱脂方法的确定 | 第33页 |
| ·消化酶的选择及消化条件的确定 | 第33-34页 |
| ·长双歧杆菌 WPG 的初步鉴定及相关分析 | 第34-39页 |
| ·溶菌酶消化试验 | 第34页 |
| ·紫外-可见光谱扫描分析 | 第34页 |
| ·氨基酸组分分析 | 第34-36页 |
| ·WPG 其它化学组分分析 | 第36-38页 |
| ·电镜观察 | 第38-39页 |
| ·长双歧杆菌完整肽聚糖免疫活性的研究 | 第39页 |
| ·长双歧杆菌完整肽聚糖体外抑瘤活性的研究 | 第39-43页 |
| ·长双歧杆菌完整肽聚糖对人胃癌细胞 MGC803 增殖的影响 | 第39-41页 |
| ·长双歧杆菌完整肽聚糖对人肝癌细胞 HepG2 增殖的影响 | 第41页 |
| ·长双歧杆菌完整肽聚糖对人乳腺癌细胞MDA-MB-231 增殖的影响 | 第41-43页 |
| 4 讨论 | 第43-46页 |
| ·WPG 分离方法 | 第43-44页 |
| ·WPG 的初步鉴定与分析 | 第44-45页 |
| ·WPG 的免疫活性研究 | 第45页 |
| ·WPG 的抑瘤活性 | 第45-46页 |
| 5 结论 | 第46-48页 |
| 致谢 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-54页 |
| 作者简介 | 第54页 |
