| 中文摘要 | 第3-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 主要缩略语与符号一览表 | 第15-17页 |
| 第一章 文献综述 | 第17-27页 |
| 1.1 羔羊早期断奶的意义 | 第17页 |
| 1.2 羔羊断奶应激 | 第17-18页 |
| 1.3 断奶对羔羊生长性能和养分消化的影响 | 第18-19页 |
| 1.4 断奶对羔羊瘤胃发育的影响 | 第19-21页 |
| 1.4.1 羔羊瘤胃发育特点和影响因素 | 第19-20页 |
| 1.4.2 断奶对瘤胃微生物区系的影响 | 第20-21页 |
| 1.5 断奶对羔羊肠道发育的影响 | 第21-24页 |
| 1.5.1 断奶对羔羊肠道屏障功能的影响 | 第21-22页 |
| 1.5.2 断奶对羔羊肠道微生物区系的影响 | 第22-23页 |
| 1.5.3 早期断奶应激导致肠道屏障功能损伤的可能机制 | 第23-24页 |
| 1.6 本研究的目的、意义和内容 | 第24-27页 |
| 1.6.1 研究的目的和意义 | 第24-25页 |
| 1.6.2 研究内容 | 第25-26页 |
| 1.6.3 技术路线 | 第26-27页 |
| 第二章 断奶对羔羊生产性能和免疫与生化指标的影响 | 第27-41页 |
| 2.1 前言 | 第27页 |
| 2.2 材料和方法 | 第27-30页 |
| 2.2.1 试验设计 | 第27页 |
| 2.2.2 试验动物饲养管理 | 第27-28页 |
| 2.2.3 开食料和代乳粉配方及营养成分 | 第28页 |
| 2.2.4 生产性能测定 | 第28-29页 |
| 2.2.5 血液样品采集 | 第29页 |
| 2.2.6 血液生理学分析 | 第29页 |
| 2.2.7 血浆应激和免疫及生化指标分析 | 第29-30页 |
| 2.2.8 营养物质消化动态变化规律测定 | 第30页 |
| 2.2.9 数据统计与分析 | 第30页 |
| 2.3 结果与分析 | 第30-36页 |
| 2.3.1 断奶对羔羊开食料采食量和生长性能的影响 | 第30-31页 |
| 2.3.2 断奶对羔羊血液生理指标的影响 | 第31-32页 |
| 2.3.3 断奶对羔羊血浆应激与免疫相关指标的影响 | 第32页 |
| 2.3.4 断奶对羔羊养分表观消化率动态变化规律的影响 | 第32-34页 |
| 2.3.5 断奶对羔羊血浆生化指标的影响 | 第34-36页 |
| 2.4 讨论 | 第36-40页 |
| 2.5 小结 | 第40-41页 |
| 第三章 断奶对羔羊瘤胃组织形态和功能的影响 | 第41-49页 |
| 3.1 前言 | 第41页 |
| 3.2 材料和方法 | 第41-43页 |
| 3.2.1 试验设计 | 第41页 |
| 3.2.2 试验动物饲养管理 | 第41页 |
| 3.2.3 样品采集 | 第41-42页 |
| 3.2.4 瘤胃形态学分析 | 第42页 |
| 3.2.5 瘤胃发酵参数和酶活性测定 | 第42页 |
| 3.2.6 瘤胃组织生长发育和代谢相关基因表达分析 | 第42-43页 |
| 3.2.7 数据统计分析 | 第43页 |
| 3.3 结果与分析 | 第43-47页 |
| 3.3.1 断奶对羔羊瘤胃形态发育的影响 | 第43-45页 |
| 3.3.2 断奶对羔羊瘤胃发酵参数和酶活性的影响 | 第45-46页 |
| 3.3.3 断奶对羔羊瘤胃组织pH调节、VFA代谢和瘤胃发育相关基因表达的影响 | 第46-47页 |
| 3.4 讨论 | 第47-48页 |
| 3.5 小结 | 第48-49页 |
| 第四章 断奶对羔羊瘤胃微生物区系的影响 | 第49-64页 |
| 4.1 前言 | 第49页 |
| 4.2 材料和方法 | 第49-51页 |
| 4.2.1 试验设计和试验动物饲养管理 | 第49页 |
| 4.2.2 样品采集 | 第49页 |
| 4.2.3 微生物DNA提取和16S rRNA基因测序 | 第49页 |
| 4.2.4 16SrRNA基因测序 | 第49-50页 |
| 4.2.5 总菌、原虫和菌种定量分析 | 第50页 |
| 4.2.6 数据统计分析 | 第50-51页 |
| 4.3 结果与分析 | 第51-61页 |
| 4.3.1 瘤胃微生物16S rRNA基因测序质量和alpha多样性 | 第51-52页 |
| 4.3.2 Beta多样性分析 | 第52-54页 |
| 4.3.3 断奶对羔羊瘤胃微生物组成的影响 | 第54-57页 |
| 4.3.4 瘤胃总菌、原虫和几种主要碳水化合物分解菌定量分析 | 第57-58页 |
| 4.3.5 瘤胃微生物区系与瘤胃发酵参数和瘤胃组织形态的关系 | 第58-61页 |
| 4.4 讨论 | 第61-63页 |
| 4.5 小结 | 第63-64页 |
| 第五章 断奶对羔羊肠道组织形态和功能的影响 | 第64-75页 |
| 5.1 前言 | 第64页 |
| 5.2 材料和方法 | 第64-66页 |
| 5.2.1 试验设计和试验动物饲养管理 | 第64页 |
| 5.2.2 样品采集 | 第64页 |
| 5.2.3 肠道组织形态学分析 | 第64-65页 |
| 5.2.4 消化酶活性测定 | 第65页 |
| 5.2.5 抗氧化和免疫指标测定 | 第65页 |
| 5.2.6 肠道组织细胞凋亡测定(Tunel染色) | 第65页 |
| 5.2.7 数据统计分析 | 第65-66页 |
| 5.3 结果与分析 | 第66-71页 |
| 5.3.1 断奶对羔羊肠道组织形态的影响 | 第66-69页 |
| 5.3.2 断奶对羔羊肠道消化酶活性的影响 | 第69页 |
| 5.3.3 断奶对羔羊肠道抗氧化和免疫指标的影响 | 第69-70页 |
| 5.3.4 断奶对羔羊肠道组织细胞凋亡的影响 | 第70-71页 |
| 5.4 讨论 | 第71-74页 |
| 5.5 小结 | 第74-75页 |
| 第六章 断奶对羔羊肠道微生物区系的影响 | 第75-88页 |
| 6.1 前言 | 第75页 |
| 6.2 材料和方法 | 第75-76页 |
| 6.2.1 试验设计和试验动物饲养管理 | 第75页 |
| 6.2.2 样品采集 | 第75页 |
| 6.2.3 微生物DNA提取和16S rRNA基因测序 | 第75页 |
| 6.2.4 16Sr RNA基因测序 | 第75-76页 |
| 6.2.5 数据统计分析 | 第76页 |
| 6.3 结果与分析 | 第76-85页 |
| 6.3.1 空肠微生物16S rRNA基因测序质量和alpha多样性 | 第76-77页 |
| 6.3.2 空肠微生物Beta多样性分析 | 第77-79页 |
| 6.3.3 断奶对羔羊空肠微生物组成的影响 | 第79-81页 |
| 6.3.4 回肠微生物16S rRNA基因测序质量和alpha多样性 | 第81-82页 |
| 6.3.5 回肠微生物Beta多样性分析 | 第82-83页 |
| 6.3.6 断奶对羔羊回肠微生物组成的影响 | 第83-85页 |
| 6.4 讨论 | 第85-87页 |
| 6.5 小结 | 第87-88页 |
| 第七章 断奶对羔羊肠道转录组的影响 | 第88-110页 |
| 7.1 前言 | 第88页 |
| 7.2 材料和方法 | 第88-90页 |
| 7.2.1 试验设计和试验动物饲养管理 | 第88页 |
| 7.2.2 样品采集 | 第88页 |
| 7.2.3 肠道组织总RNA提取 | 第88-89页 |
| 7.2.4 转录组测序 | 第89页 |
| 7.2.5 测序下机数据处理及质控 | 第89页 |
| 7.2.6 参考基因组比对 | 第89页 |
| 7.2.7 差异基因分析 | 第89页 |
| 7.2.8 差异基因功能分析 | 第89-90页 |
| 7.3 结果与分析 | 第90-105页 |
| 7.3.1 测序序列统计及参考基因组比对 | 第90页 |
| 7.3.2 基因总体表达水平分析 | 第90-91页 |
| 7.3.3 断奶对羔羊回肠组织基因表达的影响 | 第91-98页 |
| 7.3.4 日龄对羔羊回肠组织基因表达的影响 | 第98-105页 |
| 7.4 讨论 | 第105-109页 |
| 7.5 小结 | 第109-110页 |
| 第八章 结论 | 第110-112页 |
| 8.1 主要结论 | 第110页 |
| 8.2 创新点 | 第110-111页 |
| 8.3 研究展望 | 第111-112页 |
| 参考文献 | 第112-120页 |
| 在学期间的研究成果 | 第120-121页 |
| 致谢 | 第121页 |
