中文摘要 | 第3-5页 |
Abstract | 第5-7页 |
第一章 PBX3在宫颈癌中的表达及临床意义 | 第11-35页 |
1.1 引言 | 第11-12页 |
1.2 材料 | 第12-16页 |
1.2.1 主要试剂 | 第12-13页 |
1.2.2 主要仪器 | 第13-15页 |
1.2.3 细胞培养 | 第15-16页 |
1.2.4 组织标本 | 第16页 |
1.3 方法 | 第16-22页 |
1.3.1 总RAN提取方法 | 第16-17页 |
1.3.2 cDNA的合成方法 | 第17-18页 |
1.3.3 实时定量PCR(Real-time PCR) | 第18页 |
1.3.4 细胞总蛋白提取 | 第18-19页 |
1.3.5 蛋白质免疫印迹(Western-blot)实验 | 第19页 |
1.3.6 组织总RNA提取、cDNA合成和Real-time PCR实验 | 第19页 |
1.3.7 组织总蛋白提取和Western-blot实验 | 第19-20页 |
1.3.8 组织免疫组织化学染色 | 第20页 |
1.3.9 免疫组织化学染色结果判定 | 第20-21页 |
1.3.10 临床病理学数据收集、随访及伦理依据 | 第21页 |
1.3.11 统计学分析 | 第21-22页 |
1.4 结果 | 第22-28页 |
1.4.1 PBX3 mRNA在宫颈癌细胞中的表达水平明显升高 | 第22页 |
1.4.2 PBX3蛋白在宫颈癌细胞中的表达 | 第22-23页 |
1.4.3 PBX3 mRNA在宫颈癌组织中的表达 | 第23-24页 |
1.4.4 PBX3蛋白在宫颈癌组织中的表达 | 第24-25页 |
1.4.5 PBX3蛋白表达水平与宫颈癌患者临床病理学特征相关 | 第25-26页 |
1.4.6 PBX3蛋白表达水平是宫颈癌患者的独立预后因素 | 第26-27页 |
1.4.7 PBX3蛋白表达水平与宫颈癌患者的预后密切相关 | 第27-28页 |
1.5 讨论 | 第28-34页 |
1.6 小结 | 第34-35页 |
第二章 PBX3表达水平对宫颈癌增殖能力的影响及其机制研究 | 第35-47页 |
2.1 引言 | 第35页 |
2.2 材料 | 第35页 |
2.2.1 主要试剂 | 第35页 |
2.2.2 细胞培养 | 第35页 |
2.2.3 动物饲养及伦理依据 | 第35页 |
2.3 方法 | 第35-39页 |
2.3.1 PBX3-si RNA载体质粒的构建 | 第35-36页 |
2.3.2 稳定转染细胞系的建立 | 第36页 |
2.3.3 细胞总RNA提取、c DNA合成和Real-time PCR实验 | 第36页 |
2.3.4 细胞总蛋白提取和Western-blot实验 | 第36页 |
2.3.5 噻唑蓝(MTT)实验 | 第36-37页 |
2.3.6 软琼脂克隆形成实验 | 第37页 |
2.3.7 平板克隆形成实验 | 第37页 |
2.3.8 宫颈癌细胞系裸鼠皮下移植瘤模型的建立和观察 | 第37页 |
2.3.9 组织总蛋白提取和Western-blot实验 | 第37-38页 |
2.3.10 PBX3相关分子生物学机制和信号通路研究 | 第38页 |
2.3.11 统计学分析 | 第38-39页 |
2.4 结果 | 第39-43页 |
2.4.1 成功建立PBX3-si RNA稳定转染细胞系 | 第39页 |
2.4.2 PBX3的蛋白表达水平与宫颈癌细胞增殖有关 | 第39-40页 |
2.4.3 PBX3的蛋白表达水平与宫颈癌细胞克隆形成能力相关 | 第40-41页 |
2.4.4 PBX3的蛋白表达水平与宫颈癌皮下移植瘤生长速度有关 | 第41-43页 |
2.4.5 PBX3可能通过AKT信号通路影响宫颈癌细胞增殖能力 | 第43页 |
2.5 讨论 | 第43-46页 |
2.6 小结 | 第46-47页 |
第三章 结论 | 第47-48页 |
3.1 结论 | 第47页 |
3.2 研究不足与展望 | 第47-48页 |
参考文献 | 第48-67页 |
英文缩略词表 | 第67-69页 |
在学期间的研究成果 | 第69-70页 |
致谢 | 第70-71页 |