| 英文缩写一览表 | 第5-6页 |
| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 1 前言 | 第10-12页 |
| 2 实验材料 | 第12-20页 |
| 2.1 实验动物 | 第12页 |
| 2.2 实验主要仪器 | 第12-13页 |
| 2.3 实验耗材 | 第13-14页 |
| 2.4 实验试剂 | 第14-17页 |
| 2.5 实验常用溶液的配制 | 第17-18页 |
| 2.6 主要药物的配制使用和储存 | 第18-20页 |
| 3 实验方法 | 第20-27页 |
| 3.1 急性分离单个星形胶质细胞及 SR101 染色 | 第20页 |
| 3.2 星形胶质细胞免疫荧光染色 | 第20-21页 |
| 3.3 小鼠海马脑片的制备 | 第21页 |
| 3.4 记录电极（玻璃微电极）的清洗和拉制 | 第21-22页 |
| 3.5 全细胞膜片钳电极内液的配制 | 第22页 |
| 3.6 膜片钳场电位的记录 | 第22-23页 |
| 3.7 野生型和 TWIK-1 KO 小鼠脑片海马 CA1 区锥体神经元的 PPFratio 记录 | 第23页 |
| 3.8 小鼠脑片海马 CA1 区锥体神经元 Biocytin | 第23页 |
| 3.9 Wild-type 和 TWIK-1 KO 小鼠脑组织海马总蛋白质提取 | 第23-24页 |
| 3.10 BCA 法测定样品蛋白的浓度 | 第24页 |
| 3.11 Western blot | 第24-26页 |
| 3.12 数据处理和分析 | 第26-27页 |
| 4 实验结果 | 第27-39页 |
| 4.1 激活星胶mGluR3促进海马Schaffer-CA1通路长时程增强(LTP) | 第27-32页 |
| 4.2 TWIK-1基因敲除海马Schaffer-CA1通路LTP幅度减弱 | 第32-34页 |
| 4.3 TWIK-1基因敲除不影响海马分子水平突触结构 | 第34-35页 |
| 4.4 TWIK-1蛋白缺乏不影响锥体神经元树突形态 | 第35-36页 |
| 4.5 激活星胶mGluR3诱发LTP与谷氨酸-谷氨酰胺循环的相关性 | 第36-39页 |
| 5 讨论 | 第39-42页 |
| 6 结论 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-46页 |
| (综述)星形胶质细胞主导的谷氨酸-谷氨酰胺循环研究进展 | 第46-55页 |
| 参考文献 | 第52-55页 |
| 致谢 | 第55页 |
