摘要 | 第4-7页 |
ABSTRACT | 第7-9页 |
前言 | 第15-17页 |
第一章 文献综述 | 第17-28页 |
1.1 植物多倍体研究概况 | 第17-20页 |
1.1.1 植物多倍体的分类 | 第17页 |
1.1.2 异源多倍体植物的进化机制 | 第17-19页 |
1.1.2.1 植物异源多倍化过程中的遗传变化 | 第17-18页 |
1.1.2.2 植物异源多倍化过程中的表观遗传变化 | 第18-19页 |
1.1.3 异源多倍体在植物品种遗传改良中的应用 | 第19-20页 |
1.2 花生属种间杂交研究现状 | 第20-22页 |
1.2.1 花生属植物学分类 | 第20页 |
1.2.2 花生属种间杂交不亲和性 | 第20-21页 |
1.2.3 花生属种间杂交研究 | 第21-22页 |
1.3 分子标记技术在花生属上的应用研究进展 | 第22-24页 |
1.3.1 常用分子标记的种类及原理 | 第22页 |
1.3.2 分子标记技术在花生属上的应用研究进展 | 第22-24页 |
1.3.2.1 花生属内种质进化及亲缘关系鉴定研究 | 第22-23页 |
1.3.2.2 花生种质资源遗传多样性及品种鉴定研究 | 第23页 |
1.3.2.3 花生分子标记图谱构建 | 第23-24页 |
1.4 本研究的立论依据和主要内容 | 第24-28页 |
1.4.1 立论依据 | 第24-25页 |
1.4.2 主要内容 | 第25-27页 |
1.4.3 技术路线 | 第27-28页 |
第二章 花生属种间杂交异源多倍化早期表型变化研究 | 第28-36页 |
2.1 材料与方法 | 第28-29页 |
2.1.1 供试材料 | 第28页 |
2.1.2 形态学性状观察 | 第28页 |
2.1.3 花粉育性和萌发力观察 | 第28-29页 |
2.1.4 花粉母细胞减数分裂观察 | 第29页 |
2.2 结果与分析 | 第29-35页 |
2.2.1 早期多倍体世代茎、叶、花和荚果性状比较 | 第29-32页 |
2.2.2 早期多倍体世代花粉母细胞减数分裂四分体时期比较分析 | 第32-33页 |
2.2.3 早期多倍体世代花粉活力和花粉萌发力比较 | 第33-35页 |
2.3 讨论 | 第35页 |
2.4 结论 | 第35-36页 |
第三章 花生属种间杂交早期多倍体世代生理特性变化研究 | 第36-45页 |
3.1 材料与方法 | 第36-37页 |
3.1.1 供试材料 | 第36页 |
3.1.2 过氧化物酶(POD)活性的测定 | 第36页 |
3.1.3 脯氨酸的测定 | 第36-37页 |
3.1.4 丙二醛的测定 | 第37页 |
3.1.5 可溶性糖的测定 | 第37页 |
3.1.6 叶绿素含量的测定 | 第37页 |
3.2 结果与分析 | 第37-43页 |
3.2.1 种间杂交早期多倍体世代间及两亲本POD活性比较 | 第37-39页 |
3.2.2 种间杂交早期多倍体世代间及两亲本脯氨酸含量比较 | 第39-40页 |
3.2.3 种间杂交早期多倍体世代间及两亲本丙二醛含量比较 | 第40-41页 |
3.2.4 种间杂交早期多倍体世代间及两亲本可溶性糖含量比较 | 第41-42页 |
3.2.5 种间杂交早期多倍体世代间及两亲本叶绿素含量比较 | 第42-43页 |
3.3 讨论 | 第43-44页 |
3.4 结论 | 第44-45页 |
第四章 花生属种间杂交早期多倍体世代微卫星变化研究 | 第45-54页 |
4.1 材料与方法 | 第45-46页 |
4.1.1 供试材料 | 第45页 |
4.1.2 SSR反应 | 第45-46页 |
4.1.2.1 DNA提取 | 第45-46页 |
4.1.2.2 SSR-PCR扩增及产物电泳 | 第46页 |
4.1.2.3 条带统计及数据分析 | 第46页 |
4.2 结果与分析 | 第46-52页 |
4.2.1 种间杂交早期多倍体世代与其亲本微卫星比较 | 第46-49页 |
4.2.2 种间杂交早期各多倍体世代之间微卫星位点比较 | 第49-50页 |
4.2.3 种间杂交早期多倍体各世代与其亲本聚类分析 | 第50-52页 |
4.3 讨论 | 第52-53页 |
4.4 结论 | 第53-54页 |
第五章 利用SCOT标记分析花生属种间杂交异源多倍化早期基因组变化 | 第54-63页 |
5.1 材料与方法 | 第54-55页 |
5.1.1 供试材料 | 第54页 |
5.1.2 DNA提取及SCoT-PCR反应 | 第54-55页 |
5.1.3 数据统计及分析 | 第55页 |
5.2 结果 | 第55-61页 |
5.2.1 SCoT标记在早期多倍体世代材料及供体亲本中检测出的多态性 | 第55-56页 |
5.2.2 SCoT标记在早期多倍体世代材料中检测出的基因组变化特点 | 第56-58页 |
5.2.3 早期多倍体各世代之间SCoT扩增位点比较 | 第58-60页 |
5.2.4 种间杂交早期多倍体各世代与其亲本聚类分析 | 第60-61页 |
5.3 讨论 | 第61-62页 |
5.3.1 花生属种间杂交多倍化过程中基因组变化特点 | 第61-62页 |
5.3.2 SCoT与SSR分子标记比较 | 第62页 |
5.4 结论 | 第62-63页 |
第六章 花生属种间杂交早期多倍体世代基因表达变化的cDNA-SCOT分析 | 第63-76页 |
6.1 材料与方法 | 第63-65页 |
6.1.1 供试材料 | 第63-64页 |
6.1.2 花生总RNA提取及第一链cDNA的合成 | 第64页 |
6.1.3 cDNA-SCoT PCR扩增 | 第64-65页 |
6.1.4 条带统计及分析 | 第65页 |
6.1.5 差异片段回收、克隆、测序及分析 | 第65页 |
6.2 结果与分析 | 第65-72页 |
6.2.1 RNA和cDNA的质量检测 | 第65-66页 |
6.2.2 SCoT标记在早期多倍体世代材料中检测出的基因表达变化特点 | 第66-69页 |
6.2.3 差异片段的克隆、序列分析及相关基因的功能预测 | 第69-72页 |
6.3 讨论 | 第72-74页 |
6.3.1 cDNA-SCoT差异显示技术的有效性 | 第72页 |
6.3.2 花生属种间杂交多倍化过程中基因表达的稳定性 | 第72-73页 |
6.3.3 花生属种间杂交多倍化过程中基因表达变化特点 | 第73-74页 |
6.3.4 花生属种间杂交多倍化过程中表达发生变化基因的分子特性 | 第74页 |
6.4 结论 | 第74-76页 |
第七章 花生属异源多倍化早期基因表达变化的cDNA-HFO-TAG分析 | 第76-87页 |
7.1 材料与方法 | 第76-77页 |
7.1.1 供试材料 | 第76页 |
7.1.2 花生总RNA提取、cDNA的合成及cDNA-HFO-TAG扩增 | 第76-77页 |
7.1.3 条带统计及分析 | 第77页 |
7.1.4 差异片段回收、克隆、测序及分析 | 第77页 |
7.2 结果与分析 | 第77-83页 |
7.2.1 RNA和cDNA的质量检测 | 第77页 |
7.2.2 HFO-TAG标记在早期多倍体世代材料中检测出的基因表达变化特点 | 第77-80页 |
7.2.3 差异片段的克隆、序列分析及相关基因的功能预测 | 第80-83页 |
7.3 讨论 | 第83-85页 |
7.3.1 cDNA-HFO-TAG分析方法的有效性 | 第83-84页 |
7.3.2 花生属种间杂交多倍化过程中基因表达的变化特点 | 第84-85页 |
7.3.3 花生属种间杂交多倍化过程中表达发生变化基因的分子特性 | 第85页 |
7.3.4 cDNA-SCoT与cDNA-HFO-TAG差异显示技术比较 | 第85页 |
7.4 结论 | 第85-87页 |
第八章 全文总结、创新点及后续研究计划 | 第87-91页 |
8.1 全文总结 | 第87-89页 |
8.1.1 花生属种间杂交早期多倍体世代表型及细胞学性状变化研究 | 第87页 |
8.1.2 花生属种间杂交早期多倍体世代生理特性变化研究 | 第87-88页 |
8.1.3 用SSR技术用于花生属种间杂交早期多倍体世代基因组变化研究 | 第88页 |
8.1.4 用SCoT技术进行花生属种间杂交早期多倍体世代基因组变化研究 | 第88页 |
8.1.5 首次用cDNA-SCoT技术研究花生属种间杂交早期多倍体世代基因表达变化特点 | 第88-89页 |
8.1.6 改良cDNA-HFO-TAG技术并首次应用于花生属种间杂交早期多倍体世代基因表达变化特点研究 | 第89页 |
8.2 本论文创新点 | 第89-90页 |
8.3 后续研究计划 | 第90-91页 |
致谢 | 第91-93页 |
参考文献 | 第93-104页 |
附录 | 第104-106页 |