| 摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第一章 绪论 | 第12-23页 |
| 1.1 糖蜜酵母废液概述 | 第12-14页 |
| 1.1.1 糖蜜酵母废液的来源 | 第12-13页 |
| 1.1.2 糖蜜酵母废液的特性 | 第13页 |
| 1.1.3 糖蜜酵母废液的危害 | 第13-14页 |
| 1.2 糖蜜废液色素主要组分 | 第14-16页 |
| 1.2.1 糖蜜废液色素形成 | 第14-15页 |
| 1.2.2 糖蜜废液色素性质 | 第15-16页 |
| 1.3 糖蜜酵母废液脱色处理技术 | 第16-21页 |
| 1.3.1 理化方法 | 第16-19页 |
| 1.3.1.1 蒸发浓缩法 | 第16页 |
| 1.3.1.2 物理吸附法 | 第16-17页 |
| 1.3.1.3 电凝聚法 | 第17-18页 |
| 1.3.1.4 化学氧化法 | 第18-19页 |
| 1.3.2 生物处理方法 | 第19-20页 |
| 1.3.2.1 厌氧生物处理 | 第19-20页 |
| 1.3.2.2 好氧生物处理 | 第20页 |
| 1.3.3 生化联合法 | 第20-21页 |
| 1.4 本课题研究意义及主要内容 | 第21-23页 |
| 1.4.1 研究目的及意义 | 第21-22页 |
| 1.4.2 研究内容 | 第22页 |
| 1.4.3 本研究的创新点 | 第22-23页 |
| 第二章 乙酸铅电中和处理糖蜜色素 | 第23-33页 |
| 2.1 实验材料 | 第23-24页 |
| 2.1.1 样品来源 | 第23页 |
| 2.1.2 实验试剂 | 第23-24页 |
| 2.1.3 实验仪器 | 第24页 |
| 2.2 实验方法 | 第24-25页 |
| 2.2.1 乙酸铅脱色实验方法 | 第24页 |
| 2.2.2 乙酸铅组合高分子絮凝剂脱色实验方法 | 第24-25页 |
| 2.2.3 乙酸铅联合聚丙烯酰胺脱色响应面优化方法 | 第25页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第25-33页 |
| 2.3.1. 投加量、pH 和温度对乙酸铅脱色效率的影响 | 第25-27页 |
| 2.3.2. 高分子絮凝剂对乙酸铅脱色的协同作用 | 第27-29页 |
| 2.3.3. 乙酸铅与聚丙稀酰胺联合脱色响应面条件优化 | 第29-32页 |
| 2.3.4. 小结 | 第32-33页 |
| 第三章 内电解电凝聚脱除糖蜜色素研究 | 第33-42页 |
| 3.1 实验材料 | 第33-34页 |
| 3.1.1 样品来源 | 第33页 |
| 3.1.2 实验试剂 | 第33-34页 |
| 3.1.3 实验仪器 | 第34页 |
| 3.2 实验方法 | 第34-35页 |
| 3.2.1 内电解实验方法 | 第34页 |
| 3.2.2 光谱分析方法 | 第34-35页 |
| 3.2.3 薄层色谱方法 | 第35页 |
| 3.2.4 铁炭消耗量分析 | 第35页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第35-42页 |
| 3.3.1. 废液浓度及反应时间对内电解脱色的影响 | 第35-37页 |
| 3.3.2. 添加 H_2O_2对内电解脱色效果的提升作用 | 第37-39页 |
| 3.3.3 内电解过程中铁炭消耗量分析 | 第39页 |
| 3.3.4 光谱扫描及薄层色谱分析处理前后色素变化 | 第39-41页 |
| 3.3.6. 小结 | 第41-42页 |
| 第四章 黑曲霉处理糖蜜酵母废液脱色研究 | 第42-57页 |
| 4.1 实验材料 | 第42-44页 |
| 4.1.1 样品来源 | 第42页 |
| 4.1.2 菌种来源 | 第42页 |
| 4.1.3 实验试剂 | 第42-43页 |
| 4.1.4 实验仪器 | 第43-44页 |
| 4.2 实验方法 | 第44-49页 |
| 4.2.1 酵母废液黑曲霉发酵脱色实验 | 第44-45页 |
| 4.2.2 补加碳源及氮源条件下黑曲霉发酵脱色实验 | 第45页 |
| 4.2.3 黑曲霉对酵母废液吸附实验 | 第45-46页 |
| 4.2.4 表面活性剂对黑曲霉脱色的影响实验 | 第46页 |
| 4.2.5 糖蜜色素紫外可见光谱分析 | 第46页 |
| 4.2.6 糖蜜色素薄层色谱分析 | 第46-47页 |
| 4.2.7 残糖测定 | 第47页 |
| 4.2.8. 黑曲脱色进程中的酶活测定 | 第47-49页 |
| 4.2.8.1 木质素过氧化物酶酶活测定 | 第47-48页 |
| 4.2.8.2 锰依赖过氧化物酶酶活测定 | 第48页 |
| 4.2.8.3 漆酶酶活测定 | 第48-49页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第49-57页 |
| 4.3.1 糖蜜废液发酵黑曲霉生长与脱色曲线 | 第49-50页 |
| 4.3.2 补加碳源或氮源对黑曲霉生长与脱色的影响 | 第50-51页 |
| 4.3.3 脱色前后废液光谱变化 | 第51页 |
| 4.3.4 脱色前后废液色素薄层分析 | 第51-52页 |
| 4.3.5 菌体吸附的脱色作用 | 第52-53页 |
| 4.3.6 发酵过程脱色酶酶活分析 | 第53-54页 |
| 4.3.7 表面活性剂对黑曲霉发酵脱色的影响 | 第54-55页 |
| 4.3.8 小结 | 第55-57页 |
| 第五章 黑曲霉及内电解联用脱除糖蜜色素 | 第57-66页 |
| 5.1 实验材料 | 第57页 |
| 5.1.1 样品来源 | 第57页 |
| 5.1.2 菌种来源 | 第57页 |
| 5.1.3 实验试剂 | 第57页 |
| 5.1.4 实验仪器 | 第57页 |
| 5.2 实验方法 | 第57-58页 |
| 5.2.1 内电解及黑曲霉发酵脱色联用实验 | 第57-58页 |
| 5.2.2. 联合处理中黑曲酶活分析 | 第58页 |
| 5.2.3 联合处理后色素光谱扫描 | 第58页 |
| 5.2.4 联合处理后色素薄层分析 | 第58页 |
| 5.2.5 联合处理后色素 HPLC 分析 | 第58页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第58-66页 |
| 5.3.1 内电解及黑曲脱色联用处理顺序对脱色效果的影响 | 第58-60页 |
| 5.3.2 联合处理中黑曲酶生长及酶活分析 | 第60-62页 |
| 5.3.3 联合处理后废液光谱扫描 | 第62页 |
| 5.3.4 联合处理后色素薄层分析 | 第62-63页 |
| 5.3.5 联合处理后色素 HPLC 分析 | 第63-65页 |
| 5.3.6. 本章小结 | 第65-66页 |
| 结论与展望 | 第66-69页 |
| 1. 结论 | 第66页 |
| 2. 本研究的创新之处 | 第66-67页 |
| 3. 展望 | 第67-69页 |
| 参考文献 | 第69-74页 |
| 攻读学位期间取得的研究成果 | 第74-75页 |
| 致谢 | 第75-76页 |
| 附件 | 第76页 |
