| 摘要 | 第7-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 第一章 绪论 | 第13-29页 |
| 1.1 前言 | 第13页 |
| 1.2 骨组织工程 | 第13-15页 |
| 1.2.1 组织工程与骨组织工程 | 第13-14页 |
| 1.2.2 骨组织工程支架 | 第14-15页 |
| 1.3 水凝胶 | 第15-21页 |
| 1.3.1 水凝胶概述 | 第15-16页 |
| 1.3.2 水凝胶分类 | 第16-17页 |
| 1.3.3 水凝胶的制备方法 | 第17-18页 |
| 1.3.4 水凝胶的应用 | 第18-21页 |
| 1.4 微流控技术 | 第21-24页 |
| 1.4.1 微流控技术概述 | 第21-22页 |
| 1.4.2 微流控技术制备的支架 | 第22-23页 |
| 1.4.3 微流控技术的应用 | 第23-24页 |
| 1.5 静电纺丝 | 第24-27页 |
| 1.5.1 静电纺丝概述 | 第24-25页 |
| 1.5.2 电纺纤维材料 | 第25-26页 |
| 1.5.3 电纺纤维的应用 | 第26-27页 |
| 1.6 本文研究的目的意义、主要内容与创新点 | 第27-29页 |
| 1.6.1 本文研究的目的 | 第27-28页 |
| 1.6.2 本文研究的主要内容 | 第28页 |
| 1.6.3 本文研究的主要创新点 | 第28-29页 |
| 第二章 多层微纳交替结构支架的制备与表征 | 第29-40页 |
| 2.1 前言 | 第29-30页 |
| 2.2 实验材料与仪器设备 | 第30页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第30页 |
| 2.2.2 实验仪器设备 | 第30页 |
| 2.3 PCL电纺纳米纤维的制备 | 第30-31页 |
| 2.3.1 PCL纺丝液的制备 | 第30-31页 |
| 2.3.2 静电纺丝过程 | 第31页 |
| 2.4 微流控装置的制备 | 第31页 |
| 2.5 海藻酸钙水凝胶微球的制备 | 第31-32页 |
| 2.5.1 溶液的配置 | 第31-32页 |
| 2.5.2 微球的制备过程 | 第32页 |
| 2.6 多层微纳结构的制备 | 第32-33页 |
| 2.7 PCL电纺纳米纤维的表征 | 第33-34页 |
| 2.8 海藻酸钙水凝胶微球的表征 | 第34-35页 |
| 2.8.1 体视显微镜 | 第34页 |
| 2.8.2 流变学分析 | 第34-35页 |
| 2.9 多层微纳结构的表征 | 第35页 |
| 2.10 数据统计学处理 | 第35页 |
| 2.11 实验结果与分析 | 第35-39页 |
| 2.11.1 PCL纳米纤维表面形貌分析 | 第35-36页 |
| 2.11.2 海藻酸钙水凝胶微球表面形貌分析 | 第36-37页 |
| 2.11.3 海藻酸钙水凝胶流变学分析 | 第37-38页 |
| 2.11.4 多层微纳结构的证明 | 第38-39页 |
| 2.12 本章小结 | 第39-40页 |
| 第三章 多层微纳交替结构支架对rBMSCs体外成骨分化的影响 | 第40-53页 |
| 3.1 前言 | 第40页 |
| 3.2 实验材料与仪器设备 | 第40-41页 |
| 3.2.1 实验材料 | 第40-41页 |
| 3.2.2 实验仪器设备 | 第41页 |
| 3.3 细胞提取和培养 | 第41-43页 |
| 3.3.1 细胞实验准备工作 | 第41-42页 |
| 3.3.2 原代细胞提取 | 第42页 |
| 3.3.3 细胞培养 | 第42页 |
| 3.3.4 细胞冻存 | 第42-43页 |
| 3.4 细胞载入微纳结构 | 第43页 |
| 3.4.1 灭菌处理 | 第43页 |
| 3.4.2 细胞载入 | 第43页 |
| 3.5 rBMSCs的体外表征 | 第43-46页 |
| 3.5.1 荧光显微镜 | 第43-44页 |
| 3.5.2 Alamar blue | 第44页 |
| 3.5.3 碱性磷酸酶(ALP)活性的检测 | 第44-45页 |
| 3.5.4 茜素红S(Alizarin Red S)染色 | 第45-46页 |
| 3.6 数据统计学处理 | 第46页 |
| 3.7 实验结果与分析 | 第46-51页 |
| 3.7.1 细胞生存状态评价 | 第46-48页 |
| 3.7.2 细胞增殖情况评价 | 第48-49页 |
| 3.7.3 碱性磷酸酶(ALP)活性的分析 | 第49-50页 |
| 3.7.4 茜素红S(Alizarin Red S)染色分析 | 第50-51页 |
| 3.8 本章小结 | 第51-53页 |
| 第四章 多层微纳交替结构支架对rBMSCs体内成骨分化的影响 | 第53-62页 |
| 4.1 前言 | 第53页 |
| 4.2 实验材料与仪器设备 | 第53-54页 |
| 4.2.1 实验材料 | 第53-54页 |
| 4.2.2 实验仪器设备 | 第54页 |
| 4.3 材料准备 | 第54页 |
| 4.4 大鼠皮下植入模型的建立 | 第54-55页 |
| 4.4.1 大鼠处理 | 第54页 |
| 4.4.2 材料的移植 | 第54-55页 |
| 4.4.3 标本的获取 | 第55页 |
| 4.5 组织学评价 | 第55-56页 |
| 4.5.1 苏木精-伊红(H&E)染色 | 第55-56页 |
| 4.5.2 马松三色(Masson's trichrome)染色 | 第56页 |
| 4.6 免疫组化评价 | 第56页 |
| 4.7 数据统计学处理 | 第56页 |
| 4.8 实验结果与分析 | 第56-61页 |
| 4.8.1 组织学结果分析 | 第56-59页 |
| 4.8.2 免疫组化结果分析 | 第59-61页 |
| 4.9 本章小结 | 第61-62页 |
| 结论 | 第62-64页 |
| 致谢 | 第64-65页 |
| 参考文献 | 第65-73页 |
| 附录 | 第73-74页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文及科研成果 | 第74页 |
