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β-1,4-内切葡聚糖酶基因在二穗短柄草中的表达及其水解预处理分析

摘要第6-8页
ABSTRACT第8-9页
缩略语第10-14页
第一章 绪论第14-26页
    1.1 生物能的概述第14-17页
        1.1.1 能源的简介第14页
        1.1.2 生物质能的发展第14-17页
    1.2 利用基因工程技术提高纤维素生物质的利用效率第17-20页
        1.2.1 利用基因工程技术降低植物中木质素的含量第17-18页
        1.2.2 在植物中生产降解纤维的酶类第18-20页
    1.3 纤维质生物能源植物第20-21页
    1.4 二穗短柄草的简介第21-22页
    1.6 叶绿体遗传转化第22-25页
        1.6.1 叶绿体遗传转化简介第22-23页
        1.6.2 叶绿体遗传转化的原理与方法第23页
        1.6.3 叶绿体遗传转化的优点第23-24页
        1.6.4 叶绿体遗传转化的应用第24-25页
    1.8 本研究的目的和意义第25-26页
第二章 二穗短柄草转E1基因高效遗传转化体系构建的研究第26-36页
    2.1 材料与方法第26-30页
        2.1.1 实验材料第26页
        2.1.2 质粒和菌株第26-27页
        2.1.3 主要试剂第27页
        2.1.4 主要仪器第27页
        2.1.5 培养基的配制第27页
        2.1.6 农杆菌介导E1基因的转化第27-29页
        2.1.7 影响Bd21胚性愈伤组织E1基因转化因子的研究第29-30页
    2.2 结果与分析第30-33页
        2.2.1 胚性愈伤组织的继代培养的时间第30-31页
        2.2.2 农杆菌的侵染时间对抗性胚性愈伤组织转化率的影响第31页
        2.2.3 潮霉素浓度对抗性胚性愈伤组织转化率的影响第31-32页
        2.2.4 筛选培养的次数对抗性愈伤转化率的影响第32-33页
    2.3 结论与讨论第33-36页
第三章 转基因阳性植株的分子检测及E1酶活的测定第36-50页
    3.1 材料与方法第36-43页
        3.1.1 实验材料第36页
        3.1.2 主要仪器第36页
        3.1.3 主要试剂第36-37页
        3.1.4 PCR检测第37页
        3.1.5 Southern blot第37页
        3.1.6 Western blot第37-38页
        3.1.7 MUC法测酶活第38页
        3.1.8 实验方法第38-43页
    3.2 结果与分析第43-45页
        3.2.1 PCR检测第43页
        3.2.2 Southern blot分析第43-44页
        3.2.3 Western blot分析第44页
        3.2.4 纤维素酶E1酶活的测定第44-45页
    3.3 讨论与结论第45-50页
第四章 转E1基因二穗短柄草纤维素乙醇生产中的预处理条件优化第50-68页
    4.1 材料与方法第50-53页
        4.1.1 实验材料第50页
        4.1.2 主要仪器第50页
        4.1.3 主要试剂第50-51页
        4.1.4 实验方法第51-53页
    4.2 结果与讨论第53-63页
        4.2.1 葡萄糖标准曲线第53页
        4.2.2 单因素实验:底物浓度对转E1基因Bd21纤维素水解的影响第53-54页
        4.2.3 单因素实验:pH值对转E1基因Bd21中纤维素水解的影响第54-55页
        4.2.4 单因素实验:温度对转E1基因Bd21纤维素水解的影响第55-56页
        4.2.5 单因素实验:材料粒度对转E1基因Bd21纤维素水解的影响第56页
        4.2.6 单因素实验:反应时间对转E1基因Bd21纤维素水解的影响第56-57页
        4.2.7 响应面法实验设计第57-58页
        4.2.8 模型的建立及显著性检验第58-61页
        4.2.9 各因素之间的交互影响第61-63页
    4.3 讨论与结论第63-68页
第五章 结论第68-70页
致谢第70-72页
参考文献第72-82页
附录Ⅰ第82-86页
附录Ⅱ 攻读硕士期间发表论文第86页

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