| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 第一章 绪论 | 第8-18页 |
| 1.1 甾体化合物概述 | 第8-9页 |
| 1.1.1 甾体化合物的结构 | 第8页 |
| 1.1.2 甾体化合物的分类 | 第8-9页 |
| 1.1.3 甾体化合物的应用 | 第9页 |
| 1.2 甾体化合物的生物转化 | 第9-14页 |
| 1.2.1 甾体化合物生物转化法的发展 | 第9-10页 |
| 1.2.2 甾体化合物生物转化的类型 | 第10-11页 |
| 1.2.3 甾体化合物的羟化反应 | 第11-12页 |
| 1.2.4 甾体羟化反应的机理研究 | 第12-13页 |
| 1.2.5 甾体羟化反应的其他限制因素 | 第13-14页 |
| 1.3 微生物羟化去氢表雄酮的研究 | 第14-15页 |
| 1.3.1 去氢表雄酮及其羟化产物 | 第14-15页 |
| 1.3.2 7α,15α-diOH-DHEA生物转化的研究进展 | 第15页 |
| 1.4 课题研究意义 | 第15-16页 |
| 1.5 课题研究的主要内容 | 第16-18页 |
| 第二章 材料与方法 | 第18-26页 |
| 2.1 实验材料 | 第18-19页 |
| 2.1.1 实验菌株 | 第18页 |
| 2.1.2 培养基 | 第18页 |
| 2.1.3 实验试剂材料 | 第18-19页 |
| 2.1.4 主要仪器与设备 | 第19页 |
| 2.2 实验方法 | 第19-26页 |
| 2.2.1 C. lini ST-1 菌种的活化 | 第19页 |
| 2.2.2 C. lini ST-1 种子液的培养 | 第19-20页 |
| 2.2.3 底物DHEA的转化 | 第20页 |
| 2.2.4 C. lini ST-1 菌丝体形态的观察 | 第20页 |
| 2.2.5 双向凝胶电泳实验 | 第20-22页 |
| 2.2.6 qPCR验证 | 第22页 |
| 2.2.7 分析方法 | 第22-26页 |
| 第三章 结果与讨论 | 第26-42页 |
| 3.1 有机溶剂对DHEA转化的影响 | 第26-28页 |
| 3.2 乙二醇添加工艺的优化 | 第28-31页 |
| 3.2.1 乙二醇添加浓度对DHEA转化的影响 | 第28-29页 |
| 3.2.2 乙二醇添加时间对DHEA转化的影响 | 第29-30页 |
| 3.2.3 底物DHEA投料浓度对转化反应的影响 | 第30页 |
| 3.2.4 DHEA转化过程曲线 | 第30-31页 |
| 3.3 乙二醇对DHEA转化反应的作用机制探讨 | 第31-42页 |
| 3.3.1 乙二醇对底物溶解性的影响 | 第31-32页 |
| 3.3.2 乙二醇对C. lini ST-1 菌体形态的影响 | 第32页 |
| 3.3.3 C. lini ST-1 对乙二醇的利用情况 | 第32-33页 |
| 3.3.4 乙二醇代谢产物浓度变化 | 第33-34页 |
| 3.3.5 乙醇酸对DHEA转化的影响 | 第34-35页 |
| 3.3.6 辅酶NADPH对DHEA转化的影响 | 第35-36页 |
| 3.3.7 乙二醇影响下C. lini ST-1 的蛋白组学分析 | 第36-39页 |
| 3.3.8 qPCR验证关键蛋白在转录水平的变化 | 第39-42页 |
| 主要结论与展望 | 第42-44页 |
| 致谢 | 第44-46页 |
| 参考文献 | 第46-50页 |
| 附录：作者在攻读硕士学位期间发表的论文 | 第50页 |
