| 中文摘要 | 第4-6页 |
| 英文摘要 | 第6-7页 |
| 第一章 绪论 | 第10-20页 |
| 1 干扰素调节因子研究进展 | 第10-16页 |
| 1.1 鱼类干扰素调节因子研究进展 | 第11-16页 |
| 2 IRF4相关基因研究进展 | 第16-19页 |
| 2.1 IL21研究进展 | 第16-17页 |
| 2.2 Mx研究进展 | 第17页 |
| 2.3 MyD88研究进展 | 第17-18页 |
| 2.4 NOD2研究进展 | 第18-19页 |
| 2.5 PGC1α研究进展 | 第19页 |
| 3 本研究的目的与内容 | 第19-20页 |
| 第二章 黄鳝IRFs克隆研究 | 第20-36页 |
| 1 引言 | 第20页 |
| 2 试验材料与方法 | 第20-24页 |
| 2.1 主要仪器设备 | 第20-21页 |
| 2.2 试剂盒与试剂溶液 | 第21页 |
| 2.3 载体及菌株 | 第21页 |
| 2.4 试验材料 | 第21页 |
| 2.5 黄鳝总RNA提取 | 第21页 |
| 2.6 黄鳝IRFs cDNA的序列扩增 | 第21-24页 |
| 3 结果 | 第24-34页 |
| 3.1 黄鳝IRF1的cDNA全长及推导的氨基酸序列 | 第24-26页 |
| 3.2 黄鳝IRF2的cDNA片段及推导的氨基酸序列 | 第26-27页 |
| 3.3 黄鳝IRF4的cDNA片段及推导的氨基酸序列 | 第27-29页 |
| 3.4 黄鳝IRF5的cDNA片段及推导的氨基酸序列 | 第29-31页 |
| 3.5 黄鳝IRF7的cDNA全长及推导的氨基酸序列 | 第31-32页 |
| 3.6 黄鳝IRF10的cDNA全长及推导的氨基酸序列 | 第32-34页 |
| 4 讨论 | 第34-36页 |
| 第三章 黄鳝IRFs表达研究 | 第36-51页 |
| 1 引言 | 第36页 |
| 2 材料与方法 | 第36-41页 |
| 2.1 主要仪器设备 | 第36页 |
| 2.2 主要试剂盒和试剂溶液配制 | 第36-37页 |
| 2.3 黄鳝组织表达 | 第37-39页 |
| 2.4 寄生虫诱导表达 | 第39-40页 |
| 2.5 细菌诱导表达 | 第40页 |
| 2.6 poly I:C诱导表达 | 第40-41页 |
| 3 结果分析 | 第41-49页 |
| 3.1 黄鳝IRFs在不同组织中的表达变化 | 第41-45页 |
| 3.2 黄鳝IRFs在寄生虫诱导后的表达变化 | 第45-46页 |
| 3.3 黄鳝IRFs在细菌体内诱导后的表达变化 | 第46-47页 |
| 3.4 黄鳝IRFs在细菌体外诱导后的表达变化 | 第47-48页 |
| 3.5 黄鳝IRFs在poly I:C诱导后的表达变化 | 第48-49页 |
| 4 讨论 | 第49-51页 |
| 第四章 斑马鱼IRF4及其相关基因的表达研究 | 第51-67页 |
| 1 引言 | 第51页 |
| 2 试验材料与方法 | 第51-56页 |
| 2.1 主要仪器 | 第51页 |
| 2.2 主要试剂及溶液配制 | 第51-52页 |
| 2.3 斑马鱼胚胎表达 | 第52-54页 |
| 2.4 斑马鱼组织表达 | 第54-55页 |
| 2.5 LPS诱导表达 | 第55-56页 |
| 2.6 Poly I:C诱导表达 | 第56页 |
| 3 结果分析 | 第56-65页 |
| 3.1 斑马鱼IRF4及相关基因在胚胎发育时期的表达变化 | 第56-61页 |
| 3.2 斑马鱼IRF4及相关基因在不同组织中的表达变化 | 第61-63页 |
| 3.3 斑马鱼IRF4及相关基因的LPS诱导表达变化 | 第63-64页 |
| 3.4 斑马鱼IRF4及相关基因的poly I:C诱导表达变化 | 第64-65页 |
| 4 讨论 | 第65-67页 |
| 致谢 | 第67-68页 |
| 参考文献 | 第68-81页 |
| 个人简介 | 第81-82页 |
