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重组人源化单克隆抗体SM09临床前药代动力学和主要药效学研究

摘要第12-15页
ABSTRACT第15-17页
缩写第18-20页
前言第20-22页
第一部分 重组人源化单克隆抗体SM09主要药效学研究第22-58页
    第一章 重组人源化单克隆抗体SM09亲和力的测定第22-27页
        1.重组人源化单克隆抗体SM09与美罗华的蛋白含量归一实验第22-23页
            1.1 实验材料第22页
            1.2 实验方法第22-23页
            1.3 实验结果第23页
            1.4 小结第23页
        2.BIAcore3000测定重组人CD20抗原与重组人源化单克隆抗体SM09亲和常数实验第23-27页
            2.1 实验原理第23-24页
            2.2 实验材料第24页
            2.3 实验方法第24-25页
            2.4 实验结果第25-26页
            2.5 小结第26-27页
    第二章 重组人源化单克隆抗体SM09体外药效学研究第27-41页
        1.Burkitt's淋巴瘤细胞表面CD20抗原的表达第27-29页
            1.1 实验原理第27页
            1.2 实验材料第27页
            1.3 实验方法和步骤第27页
            1.4 实验结果第27-29页
            1.5 小结第29页
        2.重组人源化单克隆抗体SM09对Burkitt's细胞的生长抑制作用第29-32页
            2.1 实验原理第29-30页
            2.2 实验材料第30页
            2.3 实验方法和步骤第30-31页
            2.4 实验结果第31-32页
            2.5 小结第32页
        3.重组人源化单克隆抗体SM09对Burkitt's细胞的CDC作用第32-35页
            3.1 实验原理第32-33页
            3.2 实验材料第33页
            3.3 实验方法和步骤第33页
            3.4 实验结果第33-35页
            3.5 小结第35页
        4.重组人源化单克隆抗体SM09诱导Burkitt's细胞凋亡作用第35-38页
            4.1 实验原理第35-36页
            4.2 实验材料第36页
            4.3 实验步骤第36页
            4.4 实验结果第36-37页
            4.5 小结第37-38页
        5.重组人源化单克隆抗体SM09对Burkitt's细胞介导的ADCC效应第38-41页
            5.1 实验原理第38页
            5.2 实验材料第38页
            5.3 实验方法和步骤第38-39页
            5.4 实验结果第39-40页
            5.5 小结第40-41页
    第三章 猕猴单次静脉滴注30mg·kg-1重组人源化单克隆抗体SM09后对外周血白细胞的作用和对全血细胞的作用第41-58页
        1.实验原理第41页
        2.实验材料第41-42页
            2.1 药品和仪器第41页
            2.2 动物第41-42页
        3.实验方法第42页
            3.1 实验设计第42页
            3.2 流式细胞仪检测第42页
            3.3 血细胞测定第42页
        4.实验结果第42-57页
            4.1 猕猴单次静脉滴注30mg·kg-1重组人源化单克隆抗体SM09后对外周血白细胞的作用结果第42-54页
            4.2 猕猴单次静脉滴注30mg·kg-1重组人源化单克隆抗体SM09后对全血细胞的作用第54-57页
        5.小结第57-58页
第二部分 重组人源化单克隆抗体SM09非临床药代动力学研究第58-120页
    第一章 重组人源化单克隆抗体SM09的125I标记、放化纯度鉴定和生物活性检定第58-62页
        1.实验材料第58页
        2.实验方法第58-60页
            2.1 放射性标记第58页
            2.2 标记反应物的分离纯化第58页
            2.3 放化纯度鉴定第58-59页
            2.4 蛋白含量测定第59页
            2.5 生物活性检定第59-60页
        3.实验结果第60-61页
            3.1 标记反应物分离纯化放射性、蛋白洗脱图谱第60页
            3.2 125I-SM09的放化纯度第60-61页
            3.3 标记后生物活性的检定第61页
        4.结论第61-62页
    第二章 SHPLC和TCA酸沉方法测定猕猴生物样品中125I-SM09含量的方法学确证第62-74页
        1.SHPLC法测定猕猴血清125I-SM09浓度的方法学确证第62-67页
            1.1 实验原理第62页
            1.2 实验材料第62页
            1.3 实验方法第62-63页
                1.3.1 灵敏度和线性第62页
                1.3.2 准确度和精密度第62-63页
                1.3.3 回收率第63页
                1.3.4 稳定性第63页
            1.4 实验结果第63-66页
                1.4.1 灵敏度和线性第63-64页
                1.4.2 准确度和精密度第64-65页
                1.4.3 回收率第65页
                1.4.4 稳定性第65-66页
                1.4.5 特异性第66页
            1.5 结论第66-67页
        2.三氯醋酸(TCA)沉淀测定生物样品中125I-SM09含量的方法学确证第67-74页
            2.1 原理第67页
            2.2 实验材料第67页
            2.3 实验方法第67页
            2.4 实验结果第67-73页
                2.4.1 灵敏度及可靠定量低限(LLOQ)第67-68页
                2.4.2 线性第68页
                2.4.3 精密度和回收率第68-73页
            2.5 结论第73-74页
    第三章 猕猴单次和多次静脉滴注125I-SM09的药代动力学研究第74-103页
        1.实验目的第74页
        2.实验材料第74-75页
            2.1 药品及试剂第74页
            2.2 动物第74页
            2.3 实验仪器第74-75页
        3.实验方法第75页
            3.1 实验设计第75页
            3.2 血清药物浓度测定第75页
            3.3 统计及数据处理第75页
        4.实验结果第75-100页
            4.1 猕猴血清中125I-SM09浓度的测定第75-76页
            4.2.猕猴单次静脉滴注不同剂量125I-SM09后血清药物浓度时间变化第76-82页
                4.2.1 总放射性法测定血药浓度第76-78页
                4.2.2 TCA酸沉法测定血药浓度第78-80页
                4.2.3 SHPLC法测定血药浓度第80-82页
            4.3 猕猴多次静脉滴注中剂量125I-SM09后血清药物浓度时间变化第82-88页
            4.4 猕猴单次静脉滴注不同剂量125I-SM09后药代动力学参数第88-96页
                4.4.1 总放射性法第88-90页
                4.4.2 TCA酸沉法第90-92页
                4.4.3 SHPLC法第92-96页
            4.5 猕猴中剂量30mg/kg多次静脉滴注125I-SM09后药代动力学参数第96-100页
        5.猕猴单次和多次静脉滴注125I-SM09的药代动力学评价第100-103页
            5.1 猕猴单次静脉滴注不同剂量125I-SM09后的药代动力学评价第100-101页
            5.2 猕猴中剂量30mg/kg多次静脉滴注125I-SM09后药代动力学评价第101-103页
    第四章 125I标记SM09在猕猴体内的分布、排泄和血浆蛋白的结合研究第103-120页
        1.实验材料第103页
        2.实验方法第103-104页
            2.1 组织分布实验第103页
            2.2 粪尿排泄实验第103页
            2.3 体外蛋白结合实验第103-104页
            2.4 统计及数据处理第104页
        3.实验结果第104-118页
            3.1.三氯醋酸(TCA)沉淀测定生物样品125I-SM09含量的方法学确证第104页
            3.2 猕猴静脉滴注125I-SM09后不同时间各组织放射性分布第104-114页
                3.2.1 猕猴静脉滴注125I-SM09后不同时间各组织总放射性分布第104-109页
                3.2.2 猕猴静脉滴注125I-SM09后不同时间各组织TCA酸沉放射性分布第109-114页
            3.3 猕猴静脉滴注125I-SM09(100mg·kg-1)后放射性从粪尿中的排泄第114-118页
            3.4 125I-SM09与血浆蛋白的结合研究第118页
        4.小结第118-120页
结论第120-121页
参考文献第121-123页
个人简历第123页

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