黑木耳液体发酵及其多糖活性研究
中文摘要 | 第3-4页 |
Abstract | 第4页 |
1 文献综述 | 第7-14页 |
1.1 黑木耳简介 | 第7-9页 |
1.1.1 黑木耳形态及产地 | 第7-8页 |
1.1.2 黑木耳中主要成分简述 | 第8页 |
1.1.3 黑木耳功效 | 第8-9页 |
1.2 液体发酵技术简介 | 第9-11页 |
1.2.1 液体发酵技术 | 第9-10页 |
1.2.2 液体培养方式 | 第10页 |
1.2.3 液体发酵研究的主要方向 | 第10页 |
1.2.4 液体发酵技术的优点 | 第10页 |
1.2.5 液体发酵技术的缺点 | 第10页 |
1.2.6 液体发酵技术的应用前景 | 第10-11页 |
1.3 提取技术简介 | 第11-13页 |
1.3.1 溶剂浸提法提取 | 第11页 |
1.3.2 超声辅助提取法 | 第11页 |
1.3.3 超临界流体萃取法 | 第11-12页 |
1.3.4 酶提取法 | 第12页 |
1.3.5 微波辅助提取法 | 第12-13页 |
1.4 自由基与抗氧化剂 | 第13-14页 |
1.4.1 自由基 | 第13页 |
1.4.2 自由基的危害和抗氧化剂 | 第13页 |
1.4.3 抗氧化能力检测方法 | 第13-14页 |
2 引言 | 第14-15页 |
3 材料与方法 | 第15-24页 |
3.1 实验材料 | 第15-17页 |
3.1.1 材料 | 第15页 |
3.1.2 实验仪器 | 第15页 |
3.1.3 试剂 | 第15-17页 |
3.2 实验方法 | 第17-24页 |
3.2.1 黑木耳液体发酵优化 | 第17-18页 |
3.2.2 木耳提取物的定性试验 | 第18-19页 |
3.2.3 黑木耳多糖提取工艺条件研究 | 第19-20页 |
3.2.4 多糖纯化 | 第20-21页 |
3.2.5 抑菌实验 | 第21-22页 |
3.2.6 抗氧化实验 | 第22-24页 |
4 结果与分析 | 第24-44页 |
4.1 液体发酵单因素试验 | 第24-27页 |
4.1.1 氮源选择试验结果 | 第24页 |
4.1.2 碳源选择实验结果 | 第24页 |
4.1.3 镁磷元素含量试验结果 | 第24-25页 |
4.1.4 装液量试验结果 | 第25页 |
4.1.5 摇床转速试验结果 | 第25-26页 |
4.1.6 液体发酵培养正交优化 | 第26-27页 |
4.1.7 发酵罐放大试验 | 第27页 |
4.2 黑木耳多糖定性 | 第27-29页 |
4.2.1 木耳多糖全波长扫描图谱 | 第27-28页 |
4.2.2 黑木耳提取物红外光谱测定 | 第28-29页 |
4.3 多糖提取优化 | 第29-37页 |
4.3.1 葡萄糖标准曲线 | 第29页 |
4.3.2 多糖得率计算 | 第29-30页 |
4.3.3 粒度选择试验结果 | 第30页 |
4.3.4 提取温度对多糖得率的影响 | 第30-31页 |
4.3.5 料液比对多糖得率的影响 | 第31页 |
4.3.6 提取时间对多糖得率的影响 | 第31-32页 |
4.3.7 提取次数对多糖得率的影响 | 第32-33页 |
4.3.8 多糖提取正交优化试验结果及分析 | 第33页 |
4.3.9 响应面结果分析 | 第33-37页 |
4.4 抑菌实验结果及分析 | 第37-38页 |
4.5 最低抑制浓度 | 第38-39页 |
4.6 扫描电镜观察结果 | 第39-40页 |
4.7 Live-dead荧光染色实验结果 | 第40-41页 |
4.8 抗氧化实验结果 | 第41-44页 |
4.8.1 总还原力测定结果 | 第41-42页 |
4.8.2 DPPH清除活性的测定 | 第42-43页 |
4.8.3 羟基自由基清除能力的测定 | 第43-44页 |
5 讨论 | 第44-45页 |
5.1 黑木耳液体发酵条件优化 | 第44页 |
5.2 黑木耳多糖提取条件优化 | 第44页 |
5.3 黑木耳多糖抑菌效果研究 | 第44页 |
5.4 黑木耳多糖抗氧化 | 第44-45页 |
6 结论 | 第45-46页 |
6.1 黑木耳液体发酵条件优化 | 第45页 |
6.2 黑木耳多糖提取条件优化 | 第45页 |
6.3 黑木耳多糖抑菌效果研究 | 第45页 |
6.4 黑木耳多糖抗氧化 | 第45-46页 |
参考文献 | 第46-50页 |
致谢 | 第50-51页 |
作者简介 | 第51页 |