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粳稻95122A和95122B悬浮系建立及抗氧化性分析

摘要第3-4页
ABSTRACT第4-5页
第1章 文献综述第8-22页
    1.1 作物雄性不育研究概况第8-13页
        1.1.1 作物雄性不育的概念、类型及应用第8-10页
        1.1.2 作物雄性不育的败育机理第10-12页
        1.1.3 作物雄性不育相关的研究进展第12-13页
    1.2 作物的氧化伤害及抗氧化防御系统第13-19页
        1.2.1 活性氧的形成及功能第13-16页
        1.2.2 活性氧对作物细胞的伤害第16-17页
        1.2.3 作物的抗氧化防御系统第17-19页
    1.3 作物悬浮细胞体系的建立及应用第19-21页
        1.3.1 作物悬浮细胞培养概况第19页
        1.3.2 作物悬浮细胞培养的影响因素第19-21页
        1.3.3 作物悬浮细胞培养的应用第21页
    1.4 本研究的内容、目的和意义第21-22页
第2章 粳稻95122A和95122B悬浮细胞系的建立第22-32页
    2.1 实验材料第23页
    2.2 实验方法第23-25页
        2.2.1 粳稻95122A与95122B愈伤组织的诱导和继代第23-24页
        2.2.2 粳稻95122A与95122B悬浮细胞体系的建立第24页
        2.2.3 粳稻95122A与95122B悬浮细胞生长曲线测定第24页
        2.2.4 粳稻95122A与95122B悬浮细胞活力检测第24-25页
    2.3 结果分析第25-29页
        2.3.1 粳稻95122A与95122B愈伤组织的诱导与继代第25-26页
        2.3.2 粳稻95122A与95122B悬浮细胞系的建立第26-27页
        2.3.3 粳稻95122A与95122B悬浮细胞的生长曲线第27-29页
        2.3.4 粳稻95122A与95122B悬浮细胞的活力第29页
    2.4 讨论第29-32页
        2.4.1 植物组织培养中出现的褐化现象第29-30页
        2.4.2 植物愈伤组织与悬浮细胞系建立的关系第30-31页
        2.4.3 粳稻95122A与95122B悬浮细胞的生长和活力差异第31-32页
第3章 H_2O_2胁迫下粳稻95122A和95122B的抗氧化性第32-43页
    3.1 实验材料第33页
    3.2 实验方法第33-36页
        3.2.1 H_2O_2处理水稻悬浮细胞及酶提取液制备第33页
        3.2.2 细胞(核)形态的观察第33页
        3.2.3 水稻悬浮细胞酶提取液制备第33-34页
        3.2.4 酶活性测定第34-36页
    3.3 结果与分析第36-40页
        3.3.1 H_2O_2胁迫下水稻悬浮细胞(核)形态第36页
        3.3.2 H_2O_2胁迫下95122A和95122B悬浮细胞的抗氧化酶活性第36-40页
    3.4 讨论第40-42页
        3.4.1 H_2O_2对水稻不育系及其保持系细胞(核)形态的影响第40-41页
        3.4.2 H_2O_2胁迫下作物不育系及其保持系的抗氧化酶活性变化第41-42页
    3.5 结论与展望第42-43页
缩写词表第43-44页
致谢第44-45页
参考文献第45-53页
攻读学位期间的研究成果第53页

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