| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 第1章 绪论 | 第13-47页 |
| 1.1 引言 | 第13-14页 |
| 1.2 双光子吸收的简介 | 第14-21页 |
| 1.2.1 双光子吸收研究的发展过程 | 第14-15页 |
| 1.2.2 双光子吸收的基本理论 | 第15-17页 |
| 1.2.3 双光子吸收截面及光谱测定 | 第17-19页 |
| 1.2.4 双光子吸收材料的潜在应用 | 第19-21页 |
| 1.3 双光子荧光有机探针的研究现状 | 第21-31页 |
| 1.3.1 双光子荧光有机探针的设计策略与结构性质的关系 | 第21-22页 |
| 1.3.2 双光子荧光有机小分子探针的生物应用 | 第22-31页 |
| 1.4 双光子荧光纳米探针的研究现状 | 第31-45页 |
| 1.4.1 基于二氧化硅的双光子荧光纳米探针的研究 | 第31-35页 |
| 1.4.2 基于半导体量子点的双光子荧光纳米探针的研究 | 第35页 |
| 1.4.3 基于贵金属的双光子荧光纳米探针的研究 | 第35-36页 |
| 1.4.4 基于碳材料的双光子荧光纳米探针的研究 | 第36-39页 |
| 1.4.5 基于β-环糊精聚合物的超分子荧光纳米探针的研究 | 第39-45页 |
| 1.5 本论文选题背景及拟开展的工作 | 第45-47页 |
| 第2章 均聚物/TPdye 自组装型双光子荧光纳米探针的构建及深层组织成像研究 | 第47-62页 |
| 2.1 前言 | 第47页 |
| 2.2 实验部分 | 第47-53页 |
| 2.2.1 试剂和仪器 | 第47-48页 |
| 2.2.2 反式-4-[对-(N,N-二乙基胺基)苯基]乙烯基-4‘（-4-N,N-二乙胺基）苯（DEAS)的制备 | 第48-50页 |
| 2.2.3 DEAS@PMMA-co-MAA 纳米胶束的制备 | 第50-51页 |
| 2.2.4 DEAS@PMMA-co-MAA 纳米胶束浓度的计算 | 第51页 |
| 2.2.5 荧光量子产率和双光子吸收截面的测定 | 第51-52页 |
| 2.2.6 细胞培养和细胞毒性实验 | 第52页 |
| 2.2.7 双光子细胞成像 | 第52页 |
| 2.2.8 双光子深层组织切片成像 | 第52-53页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第53-61页 |
| 2.3.1 设计原理 | 第53页 |
| 2.3.2 DEAS@PMMA-co-MAA 纳米胶束的表征 | 第53-55页 |
| 2.3.3 DEAS@PMMA-co-MAA 纳米胶束的光谱性质 | 第55页 |
| 2.3.4 DEAS@PMMA-co-MAA 纳米胶束的光学稳定性 | 第55-58页 |
| 2.3.5 在复杂体系中的光谱性质 | 第58页 |
| 2.3.6 细胞毒性考察 | 第58-59页 |
| 2.3.7 活细胞水平上的双光子成像研究 | 第59-60页 |
| 2.3.8 深层组织中的单双光子成像对比研究 | 第60-61页 |
| 2.4 小结 | 第61-62页 |
| 第3章 金纳米载体/TPdye 交联传感体系的构建及 Collagenase 活性成像和 CN-的双组分检测 | 第62-86页 |
| 3.1 前言 | 第62-63页 |
| 3.2 实验部分 | 第63-66页 |
| 3.2.1 试剂和仪器 | 第63页 |
| 3.2.2 双光子染料 TPdye 的制备 | 第63-64页 |
| 3.2.3 13 nm AuNPs 的制备 | 第64页 |
| 3.2.4 多肽 CDGRG-TPdye 修饰 AuNPs 的制备 | 第64-65页 |
| 3.2.5 多肽 CDGRG-TPdye 修饰 AuNPs 的表征 | 第65页 |
| 3.2.6 Collagenase 活性检测的体外实验 | 第65-66页 |
| 3.2.7 细胞培养及细胞毒性考察 | 第66页 |
| 3.2.8 组织切片的制备及双光子组织成像 | 第66页 |
| 3.2.9 CN-的体外检测 | 第66页 |
| 3.3 实验结果与讨论 | 第66-85页 |
| 3.3.1 设计原理 | 第66-67页 |
| 3.3.2 CDGRG-TPdye 的光谱性质 | 第67-68页 |
| 3.3.3 CDGRG-TPdye 的稳定性考察 | 第68-70页 |
| 3.3.4 AuNPs@CDGRG-TPdye 双光子纳米探针的表征 | 第70-73页 |
| 3.3.5 AuNPs@CDGRG-TPdye 双光子纳米探针的表面覆盖率 | 第73-74页 |
| 3.3.6 FRET 的可行性考察 | 第74-75页 |
| 3.3.7 Collagenase 活性检测的相关实验数据 | 第75-81页 |
| 3.3.8 CN-体外检测的相关实验数据 | 第81-85页 |
| 3.4 小结 | 第85-86页 |
| 第4章 聚β-环糊精包络物诱导的双光子荧光纳米胶束体系的构建及靶向生物医学成像研究 | 第86-102页 |
| 4.1 前言 | 第86页 |
| 4.2 实验部分 | 第86-92页 |
| 4.2.1 试剂和仪器 | 第86-87页 |
| 4.2.2 β-环糊精聚合物 (βCDP)的制备 | 第87-88页 |
| 4.2.3 反式-4-[对-(N,N-二乙基胺基)苯基]乙烯基-N-甲基吡啶碘(DEASPI)的制备 | 第88-89页 |
| 4.2.4 DEASPI/βCDP 纳米胶束的制备 | 第89页 |
| 4.2.5 DEASPI/βCDP@RGD 纳米胶束的制备及表征 | 第89-90页 |
| 4.2.6 细胞培养和细胞毒性考察 | 第90页 |
| 4.2.7 双光子细胞成像 | 第90-91页 |
| 4.2.8 双光子组织切片成像 | 第91页 |
| 4.2.9 荧光量子产率和双光子吸收截面积的测定 | 第91-92页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第92-101页 |
| 4.3.1 设计原理 | 第92-93页 |
| 4.3.2 纳米胶束的表征 | 第93-95页 |
| 4.3.3 双光子吸收截面和光谱测定 | 第95-97页 |
| 4.3.4 双光子细胞实验 | 第97-101页 |
| 4.4 小结 | 第101-102页 |
| 第5章 聚β-环糊精/TPdye 双光子荧光纳米探针的构建及活细胞和组织中Caspase-3 活性成像研究 | 第102-122页 |
| 5.1 前言 | 第102页 |
| 5.2 实验部分 | 第102-106页 |
| 5.2.1 试剂和仪器 | 第102-103页 |
| 5.2.2 DEASPI/βCDP@Ad-DEVD-BHQ2 纳米交联物的制备 | 第103-104页 |
| 5.2.3 HPLC 分析 | 第104页 |
| 5.2.4 Caspase-3 活性检测的体外实验 | 第104-105页 |
| 5.2.5 细胞摄取和细胞毒性考察 | 第105页 |
| 5.2.6 Caspase-3 活性的双光子细胞成像研究 | 第105页 |
| 5.2.7 Caspase-3 活性的双光子深层组织成像研究 | 第105-106页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第106-121页 |
| 5.3.1 设计原理 | 第106-107页 |
| 5.3.2 DEASPI/βCDP@Ad-DEVD-BHQ2 纳米交联物的制备及表征 | 第107-111页 |
| 5.3.3 细胞膜穿透性能和细胞毒性考察 | 第111-114页 |
| 5.3.4 传感机理验证 | 第114-117页 |
| 5.3.5 复杂生物样品中 caspase-3 活性的双光子检测性能考察 | 第117-118页 |
| 5.3.6 活细胞和组织中 caspase-3 活性的双光子成像研究 | 第118-121页 |
| 5.4 小结 | 第121-122页 |
| 第6章 总结与展望 | 第122-124页 |
| 参考文献 | 第124-141页 |
| 附录 攻读学位期间所发表的学术论文目录 | 第141-142页 |
| 致谢 | 第142页 |
