前言 | 第4-6页 |
中文摘要 | 第6-10页 |
Abstract | 第10-13页 |
中英文缩略词对照表 | 第17-19页 |
第1章 绪论 | 第19-35页 |
1.1 MLL基因及其编码蛋白的结构 | 第19-22页 |
1.2 野生型MLL蛋白在造血系统中的功能 | 第22-23页 |
1.3 MLL融合蛋白的结构及功能 | 第23-26页 |
1.3.1 MLL融合蛋白的结构及分类 | 第23-24页 |
1.3.2 常见的MLL融合蛋白 | 第24-25页 |
1.3.3 MLL融合蛋白与白血病的发生 | 第25-26页 |
1.4 MLL-r白血病的临床特征 | 第26-31页 |
1.4.1 MLL-r白血病的流行病学特征 | 第26-27页 |
1.4.2 MLL-r白血病的临床特征 | 第27-28页 |
1.4.3 MLL-r白血病的系别决定和转换 | 第28-31页 |
1.5 MLL-r白血病小鼠模型发展现状 | 第31-34页 |
1.5.1 小鼠MLL-r白血病模型 | 第31-33页 |
1.5.2 MLL-r白血病人源化小鼠模型 | 第33-34页 |
1.6 立题依据 | 第34-35页 |
第2章 材料与方法 | 第35-57页 |
2.1 主要试剂与器材 | 第35-40页 |
2.1.1 主要试剂 | 第35-39页 |
2.1.2 主要仪器及器材 | 第39页 |
2.1.3 实验动物及组织 | 第39-40页 |
2.2 试验方法 | 第40-57页 |
2.2.1 MACS分离人胚胎肝脏造血干细胞 | 第40-42页 |
2.2.2 质粒的转化、提取及纯化 | 第42-44页 |
2.2.3 包装病毒 | 第44-47页 |
2.2.4 人CD34+造血干细胞的感染 | 第47-49页 |
2.2.5 MLL-AF9白血病人源化小鼠模型的构建及检测 | 第49-50页 |
2.2.6 流式细胞术检测细胞表面分子 | 第50页 |
2.2.7 细胞离心涂片并染色 | 第50页 |
2.2.8 小鼠胫骨骨髓穿刺术 | 第50-51页 |
2.2.9 小鼠胫骨骨髓腔内注射 | 第51页 |
2.2.10 尾静脉高压注射人IL-3 质粒DNA | 第51-52页 |
2.2.11 Influx分选细胞 | 第52页 |
2.2.12 细胞基因组DNA提取 | 第52-53页 |
2.2.13 IGH基因重排检测 | 第53页 |
2.2.14 Southern印迹杂交 | 第53-55页 |
2.2.15 数据统计和分析 | 第55-57页 |
第3章 实验结果 | 第57-73页 |
3.1 MLL-AF9白血病人源化小鼠模型的建立 | 第57-65页 |
3.1.1 分选人胚胎肝脏CD34+造血干细胞 | 第57页 |
3.1.2 MLL- AF9逆转录病毒感染人胚胎肝脏CD34+造血干细胞 | 第57-58页 |
3.1.3 MLL-AF9 h FLCs可在NSG小鼠诱发ALL | 第58-60页 |
3.1.4 MLL-AF9 h FLCs可在NSG/SGM3小鼠诱发AML | 第60-62页 |
3.1.5 MLL- AF9逆转录病毒感染健康成人骨髓CD34+造血干细胞 | 第62页 |
3.1.6 MLL-AF9 a BMCs在NSG小鼠未能诱发白血病 | 第62-64页 |
3.1.7 MLL-AF9 a BMCs可在NSG/SGM3小鼠诱发AML | 第64-65页 |
3.2 细胞因子在MLL-AF9 AML发生中的作用 | 第65-73页 |
3.2.1 MLL-AF9 h FLCs-NSG/SGM AML细胞表面表达hu CD123(hu IL-3R) | 第65-66页 |
3.2.2 静脉高压注射人IL-3 质粒可加快MLL-AF9 h FLCs- NSG/SMG3 AML细胞在NSG小鼠的植入及迁移 | 第66-69页 |
3.2.3 原代MLL-AF9 h FLCs-NSG/SGM3 AML细胞植入IL-3 质粒高压静脉注射的NSG小鼠后可发生急性混合谱系白血病 | 第69-71页 |
3.2.4 MLL-AF9 h FLCs MLL中的CD19+CD33-GFP+和CD19- CD33+GFP+白血病细胞可能起源于同一白血病干细胞 | 第71-73页 |
第4章 讨论 | 第73-79页 |
第5章 结论 | 第79-81页 |
参考文献 | 第81-97页 |
在学期间所取得的科研成果 | 第97-99页 |
致谢 | 第99-100页 |