| 摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 引言 | 第13-15页 |
| 1 综述：炎症与帕金森病的研究进展 | 第15-25页 |
| 1.1 帕金森氏病 | 第15-18页 |
| 1.1.1 帕金森氏病（PD） | 第15-16页 |
| 1.1.2 PD的致病机制 | 第16-17页 |
| 1.1.3 PD的研究现状及进展 | 第17-18页 |
| 1.2 帕金森氏病与炎症反应 | 第18-23页 |
| 1.2.1 小胶质细胞与PD之间的关系 | 第18-21页 |
| 1.2.2 星形胶质细胞与PD之间的关系 | 第21-23页 |
| 1.3 PGC-1α 与炎症反应的关系 | 第23-24页 |
| 1.4 展望 | 第24-25页 |
| 2 实验一MPTP最佳损伤时间窗的确定 | 第25-42页 |
| 2.1 材料与方法 | 第25-29页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第25页 |
| 2.1.2 仪器与试剂 | 第25-26页 |
| 2.1.3 实验方法和步骤 | 第26-29页 |
| 2.2 实验结果 | 第29-42页 |
| 2.2.1 免疫荧光染色和Western Blot检测小鼠黑质致密部（SNc）多巴胺能（TH阳性）的表达 | 第29-33页 |
| 2.2.2 免疫荧光染色和Western Blot检测小鼠黑质PGC-1α 的定位及表达 | 第33-36页 |
| 2.2.3 免疫荧光染色检测小鼠黑质小胶质细胞和星形胶质细胞形态及表达的变化 | 第36-39页 |
| 2.2.4 FJC染色方法观察黑质致密部细胞凋亡 | 第39-42页 |
| 3 实验二PGC-1α 基因干扰慢病毒的构建 | 第42-57页 |
| 3.1 材料与方法 | 第42-49页 |
| 3.1.1 实验细胞及培养 | 第42页 |
| 3.1.2 仪器与试剂 | 第42-44页 |
| 3.1.3 实验方法和步骤 | 第44-49页 |
| 3.2 实验结果 | 第49-57页 |
| 3.2.1 阳性克隆PCR鉴定电泳图 | 第49-52页 |
| 3.2.2 荧光法测定病毒的滴度 | 第52-54页 |
| 3.2.3 慢病毒感染SH-SY5Y细胞后基因表达情况 | 第54-56页 |
| 3.2.4 qPCR验证PGC-1α 三个干扰靶点的干扰效率 | 第56-57页 |
| 4 实验三干扰PGC-1α 基因表达对炎症反应的影响 | 第57-79页 |
| 4.1 材料与方法 | 第57-59页 |
| 4.1.1 实验动物 | 第57页 |
| 4.1.2 仪器与试剂 | 第57页 |
| 4.1.3 实验方法和步骤 | 第57-59页 |
| 4.2 实验结果 | 第59-79页 |
| 4.2.1 PGC-1α 介导的PD模型小鼠自主活动、站立、转棒、游泳实验检测结果 | 第59-60页 |
| 4.2.2 PGC-1α 基因干扰介导的PD模型小鼠黑质致密部（SNc）多巴胺能（TH阳性）神经元形态差异及数量统计 | 第60-64页 |
| 4.2.3 PGC-1α 基因干扰介导的PD模型小鼠黑质PGC-1α 表达差异 | 第64-68页 |
| 4.2.4 PGC-1α 基因干扰介导的PD模型小鼠黑质小胶质细胞和星形胶质细胞形态及表达的变化 | 第68-75页 |
| 4.2.5 小鼠黑质小胶质细胞和星形胶质细胞与PGC-1α 免疫荧光双标 | 第75-77页 |
| 4.2.6 PGC-1α 基因过表达与干扰介导的PD模型小鼠黑质致密部炎症反应变化 | 第77-79页 |
| 5 讨论 | 第79-82页 |
| 结论 | 第82-83页 |
| 参考文献 | 第83-90页 |
| 附录 | 第90-92页 |
| 后记（含致谢） | 第92-93页 |
| 攻读硕士学位期间取得的科研成果清单 | 第93页 |
| 攻读硕士学位期间参加研究的课题 | 第93页 |
