花生对黄曲霉抗性的生理特性研究
| 英文缩写表 | 第8-9页 |
| 摘要 | 第9-10页 |
| Abstract | 第10-11页 |
| 第一章 绪论 | 第12-23页 |
| 1. 花生概况及研究意义 | 第12-14页 |
| 1.1 花生的种植现状 | 第12-13页 |
| 1.2 本项目的研究意义 | 第13-14页 |
| 2. 花生黄曲霉菌及黄曲霉毒素简介 | 第14-17页 |
| 2.1 黄曲霉菌的简介 | 第14页 |
| 2.2 黄曲霉毒素的简介 | 第14-15页 |
| 2.3 黄曲霉毒素的危害性 | 第15-16页 |
| 2.4 黄曲霉对于花生的侵染 | 第16-17页 |
| 2.5 黄曲霉毒素的控制方法 | 第17页 |
| 3. 花生黄曲霉的研究进展 | 第17-21页 |
| 3.1 种皮结构与抗性的关系 | 第17-19页 |
| 3.2 抗感机制方面的研究 | 第19-20页 |
| 3.3 提高抗性的研究 | 第20-21页 |
| 3.4 花生基因改良方面研究 | 第21页 |
| 4. 存在问题 | 第21-23页 |
| 第二章 材料与方法 | 第23-26页 |
| 1 材料 | 第23-24页 |
| 1.1 供试花生品种 | 第23页 |
| 1.2 供试黄曲霉菌株及培养 | 第23页 |
| 1.3 接菌及培养 | 第23-24页 |
| 2. 生理生化指标测定方法 | 第24-26页 |
| 2.1 活性氧代谢相关指标的测定 | 第24-25页 |
| 2.1.1 抗性评价标准 | 第24页 |
| 2.1.2 花生膜透性测定 | 第24页 |
| 2.1.3 MDA含量测定 | 第24页 |
| 2.1.4 CAT活性测定 | 第24页 |
| 2.1.5 SOD活性测定 | 第24-25页 |
| 2.1.6 可溶性蛋白质含量测定 | 第25页 |
| 2.2 酚类物质测定 | 第25页 |
| 2.2.1 酚类物质提取 | 第25页 |
| 2.2.2 类黄酮含量测定 | 第25页 |
| 2.2.3 总酚含量的测定 | 第25页 |
| 2.2.4 花色素苷含量的测定 | 第25页 |
| 2.3 数据统计分析、图表制作 | 第25-26页 |
| 第三章 结果与分析 | 第26-34页 |
| 1. 花生品种对黄曲霉抗性的鉴定 | 第26-27页 |
| 2. 黄曲霉菌侵染对花生种子活性氧代谢的影响 | 第27-30页 |
| 2.1 黄曲霉菌侵染对花生细种子细胞膜的伤害 | 第27-28页 |
| 2.2 黄曲霉菌侵染对花生种子MDA含量的影响 | 第28页 |
| 2.3 黄曲霉菌侵染对花生种子SOD活性的影响 | 第28-29页 |
| 2.4 黄曲霉菌侵染对花生种子CAT活性的影响 | 第29-30页 |
| 3. 黄曲霉菌侵染对花生酚类物质的影响 | 第30-33页 |
| 3.1 黄曲霉菌侵染对花生种子花色素苷的影响 | 第30-31页 |
| 3.2 黄曲霉菌侵染对花生种子总酚的影响 | 第31-32页 |
| 3.3 黄曲霉菌侵染对花生种子类黄酮的影响 | 第32-33页 |
| 4. 黄曲霉菌侵染对花生种子可溶性蛋白质的影响 | 第33-34页 |
| 第四章 讨论 | 第34-37页 |
| 1. 黄曲霉与花生体内活性氧代谢的关系 | 第34-35页 |
| 1.1 MDA含量的变化规律及其与抗性的关系 | 第34页 |
| 1.2 SOD活性的变化规律及其与抗性的关系 | 第34-35页 |
| 1.3 CAT活性的变化规律及其与抗性的关系 | 第35页 |
| 2. 黄曲霉与花生体内酚类物质的关系 | 第35-36页 |
| 2.1 黄曲霉与花生花色素苷的关系 | 第35页 |
| 2.2 黄曲霉与花生总酚及类黄酮的关系 | 第35-36页 |
| 3. 黄曲霉与花生可溶性蛋白质的关系 | 第36-37页 |
| 第五章 结论与展望 | 第37-39页 |
| 1. 结论 | 第37-38页 |
| 2. 展望 | 第38-39页 |
| 参考文献 | 第39-42页 |
| 致谢 | 第42页 |
