| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 引言 | 第12-14页 |
| 第一章 文献综述 | 第14-18页 |
| 1 白花蛇舌草抗肿瘤有效成分及抗癌机制研究 | 第14-15页 |
| 1.1 黄酮类 | 第14页 |
| 1.2 蒽醌类 | 第14-15页 |
| 1.3 萜类 | 第15页 |
| 1.4 甾醇类 | 第15页 |
| 1.5 多糖类 | 第15页 |
| 2 半枝莲抗肿瘤有效成分及抗癌机制研究 | 第15-16页 |
| 2.1 黄酮类 | 第15-16页 |
| 2.2 多糖类 | 第16页 |
| 3 DACH1与FASN抗癌作用机制研究 | 第16-17页 |
| 4 结语 | 第17-18页 |
| 第二章 半枝莲与白花蛇舌草及药对挥发油和石油醚部位GC-MS成分分析及其抗子宫内膜癌细胞活性研究 | 第18-44页 |
| 1 实验材料 | 第18-19页 |
| 1.1 药材与细胞株 | 第18页 |
| 1.2 主要试剂 | 第18页 |
| 1.3 主要仪器和设备 | 第18-19页 |
| 2 实验方法 | 第19-22页 |
| 2.1 溶液的配制 | 第19-20页 |
| 2.2 细胞复苏及培养 | 第20页 |
| 2.3 半枝莲与白花蛇舌草及药对挥发油和石油醚部位的供试药液制备 | 第20-21页 |
| 2.4 GC-MS分析条件 | 第21-22页 |
| 2.5 MTT法测定半枝莲、白花蛇舌草及药对挥发油、石油醚部位对HEC-1A细胞的生长抑制作用 | 第22页 |
| 3 结果 | 第22-42页 |
| 3.1 半枝莲与白花蛇舌草及药对挥发油、石油醚部位GC-MS分析结果 | 第22-40页 |
| 3.2 半枝莲与白花蛇舌草及药对挥发油、石油醚部位对HEC-1A细胞的生长抑制作用 | 第40-42页 |
| 4 讨论 | 第42-44页 |
| 第三章 DACH1基因抑制人子宫内膜癌细胞HEC-1A增殖机制的研究 | 第44-56页 |
| 1 实验材料 | 第44-45页 |
| 1.1 病毒，细胞株与裸鼠 | 第44页 |
| 1.2 主要试剂 | 第44-45页 |
| 1.3 主要仪器 | 第45页 |
| 2 实验方法 | 第45-47页 |
| 2.1 病毒感染及实验分组 | 第45页 |
| 2.2 实时荧光定量PCR法检测重组慢病毒LV-DACH1-GFP感染后HEC-1A细胞中DACH1 mRNA的表达 | 第45页 |
| 2.3 蛋白质印迹法检测重组慢病毒LV-DACH1-GFP感染后HEC-1A细胞中DACH1蛋白的表达 | 第45-46页 |
| 2.4 MTT法检测重组慢病毒LV-DACH1-GFP感染后HEC-1A细胞增殖能力 | 第46页 |
| 2.5 FCM法检测重组慢病毒LV-DACH1-GFP感染后HEC-1A细胞的细胞周期分布 | 第46页 |
| 2.6 细胞克隆形成能力检测 | 第46-47页 |
| 2.7 Transwell法检测细胞迁移能力 | 第47页 |
| 2.8 DACH1对FASN蛋白表达的影响 | 第47页 |
| 2.9 DACH1对人子宫内膜癌HEC-1A细胞裸鼠皮下异种移植瘤的影响 | 第47页 |
| 3 结果 | 第47-54页 |
| 3.1 重组慢病毒感染后HEC-1A细胞中绿色荧光蛋白的表达及分布情况 | 第47-48页 |
| 3.2 重组慢病毒感染后HEC-1A细胞中DACH1 m RNA和蛋白的表达水平明显上调 | 第48-50页 |
| 3.3 重组慢病毒LV-DACH1-GFP感染后HEC-1A细胞的增殖被抑制 | 第50页 |
| 3.4 重组慢病毒LV-DACH1-GFP感染后HEC-1A细胞的细胞周期被阻滞 | 第50-51页 |
| 3.5 重组慢病毒LV-DACH1-GFP感染后抑制HEC-1A细胞的克隆形成能力 | 第51-52页 |
| 3.6 重组慢病毒LV-DACH1-GFP感染后抑制HEC-1A细胞的迁移能力 | 第52-53页 |
| 3.7 DACH1对FASN蛋白的表达的影响 | 第53页 |
| 3.8 重组慢病毒感染后HEC-1A细胞体内增殖能力被抑制 | 第53-54页 |
| 4 讨论 | 第54-56页 |
| 第四章 白花蛇舌草石油醚部位抑制子宫内膜癌细胞HEC-1A体内外增殖、诱导细胞凋亡及相关机制的研究 | 第56-68页 |
| 1 实验材料 | 第56-57页 |
| 1.1 药材，细胞株与裸鼠 | 第56页 |
| 1.2 主要试剂 | 第56页 |
| 1.3 主要仪器 | 第56-57页 |
| 2 实验方法 | 第57-59页 |
| 2.1 溶液的配制 | 第57页 |
| 2.2 细胞形态学观察 | 第57页 |
| 2.3 细胞克隆形成能力检测 | 第57页 |
| 2.4 平板划痕法和Transwell小室培养法检测细胞迁移能力 | 第57-58页 |
| 2.5 细胞周期检测 | 第58页 |
| 2.6 细胞凋亡检测 | 第58页 |
| 2.7 westernblot检测白DACH1、FASN、Cyclin D1及Bcl-2 蛋白的表达 | 第58页 |
| 2.8 白花蛇舌草石油醚部位对人子宫内膜癌HEC-1A细胞裸鼠皮下异种移植瘤的影响 | 第58-59页 |
| 2.9 移植瘤组织病理形态学观察 | 第59页 |
| 3 结果 | 第59-66页 |
| 3.1 白花蛇舌草石油醚部位能有效抑制HEC-1A细胞的增殖 | 第59页 |
| 3.2 白花蛇舌草石油醚部位能抑制HEC-1A细胞的克隆形成能力 | 第59-60页 |
| 3.3 白花蛇舌草石油醚部位能抑制HEC-1A细胞迁移能力 | 第60-62页 |
| 3.4 白花蛇舌草石油醚部位能使HEC-1A细胞的周期阻滞在G 1 期 | 第62页 |
| 3.5 白花蛇舌草石油醚部位通过促进Caspase-3 表达进而诱导细胞凋亡 | 第62-63页 |
| 3.6 westernblot检测白花蛇舌草石油醚部位对DACH1、FASN、Cyclin D1及Bcl-2 蛋白的表达的影响 | 第63-64页 |
| 3.7 白花蛇舌草石油醚部位对HEC-1A肿瘤的生长表现出明显抑制作用 | 第64-66页 |
| 4 结论 | 第66-68页 |
| 第五章 白花蛇舌草石油醚部位联合DACH1抑制子宫内膜癌细胞HEC-1A增殖及相关机制的研究 | 第68-76页 |
| 1 实验材料 | 第68页 |
| 1.1 药材，细胞株与裸鼠 | 第68页 |
| 1.2 主要试剂 | 第68页 |
| 1.3 主要仪器 | 第68页 |
| 2 实验方法 | 第68-70页 |
| 2.1 细胞形态学观察 | 第68页 |
| 2.2 细胞增殖抑制率检测 | 第68页 |
| 2.3 平板划痕法和Transwell小室培养法检测细胞迁移能力 | 第68-69页 |
| 2.4 细胞凋亡检测 | 第69页 |
| 2.5 白花蛇舌草石油醚部位对人子宫内膜癌HEC-1A/DACH1细胞裸鼠皮下异种移植瘤的影响 | 第69-70页 |
| 3 结果 | 第70-74页 |
| 3.1 白花蛇舌草石油醚部位能有效抑制HEC-1A/DACH1细胞的增殖 | 第70-71页 |
| 3.2 白花蛇舌草石油醚部位能抑制HEC-1A/DACH1细胞迁移能力 | 第71-72页 |
| 3.3 白花蛇舌草石油醚部位通过促进Caspase-3 表达进而诱导细胞凋亡 | 第72-73页 |
| 3.4 白花蛇舌草石油醚部位对HEC-1A/DACH1肿瘤的生长表现出明显抑制作用 | 第73-74页 |
| 4 讨论 | 第74-76页 |
| 参考文献 | 第76-84页 |
| 致谢 | 第84-86页 |
| 论文著作 | 第86页 |
| 在校期间参加的科研课题 | 第86页 |
