| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第1章 绪论 | 第11-25页 |
| 1.1 卡拉胶简介 | 第12-14页 |
| 1.2 卡拉胶的应用 | 第14-15页 |
| 1.3 卡拉胶生理活性研究进展 | 第15-16页 |
| 1.3.1 抗肿瘤活性 | 第15页 |
| 1.3.2 抗病毒活性 | 第15页 |
| 1.3.3 抗凝血活性 | 第15-16页 |
| 1.3.4 治疗胃及肠道消化性溃疡 | 第16页 |
| 1.4 卡拉胶寡糖活性研究进展 | 第16-18页 |
| 1.4.1 抗病毒活性 | 第17页 |
| 1.4.2 抗肿瘤活性 | 第17-18页 |
| 1.4.3 抗氧化活性 | 第18页 |
| 1.4.4 抑制血管生成 | 第18页 |
| 1.5 卡拉胶寡糖制备方法简介 | 第18-20页 |
| 1.5.1 物理法裂解 | 第19页 |
| 1.5.2 化学法降解 | 第19页 |
| 1.5.3 酶法降解 | 第19-20页 |
| 1.6 卡拉胶寡糖分离纯化方法简介 | 第20页 |
| 1.7 卡拉胶酶简介 | 第20-23页 |
| 1.7.1 κ-卡拉胶酶 | 第21-22页 |
| 1.7.2 ι-卡拉胶酶 | 第22-23页 |
| 1.7.3 λ-卡拉胶酶简介 | 第23页 |
| 1.8 卡拉胶酶的应用 | 第23-25页 |
| 1.8.1 卡拉胶酶在抗肿瘤方面的应用 | 第23页 |
| 1.8.2 卡拉胶酶在藻类生物乙醇制备方面的应用 | 第23-24页 |
| 1.8.3 卡拉胶酶作为清洁剂的添加剂 | 第24页 |
| 1.8.4 卡拉胶酶用于藻类原生质体的分离和制备 | 第24-25页 |
| 第2章 印尼热泉样品产κ-卡拉胶酶菌株的筛选及多样性分析 | 第25-34页 |
| 2.1 实验材料 | 第25-26页 |
| 2.1.1 样品采集 | 第25页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第25页 |
| 2.1.3 培养基 | 第25页 |
| 2.1.4 配比试剂 | 第25-26页 |
| 2.1.5 实验所用仪器 | 第26页 |
| 2.2 实验方法 | 第26-30页 |
| 2.2.1 富集培养 | 第26页 |
| 2.2.2 对富集培养液进行初筛 | 第26页 |
| 2.2.3 卢戈氏碘液染色法进行复筛 | 第26-27页 |
| 2.2.4 卡拉胶酶活性菌株16SrRNA基因鉴定 | 第27页 |
| 2.2.5 卡拉胶酶活性菌株系统发育树的构建 | 第27页 |
| 2.2.6 卡拉胶酶活力测定——DNS法 | 第27-30页 |
| 2.3 实验结果与分析 | 第30-32页 |
| 2.3.1 卡拉胶酶活性菌株的初筛与复筛 | 第30-31页 |
| 2.3.2 DNS法测定酶活 | 第31页 |
| 2.3.3 产卡拉胶酶活性菌株的系统发育分析 | 第31-32页 |
| 2.4 讨论 | 第32-33页 |
| 2.5 小结 | 第33-34页 |
| 第3章 卡拉胶酶产生菌Bacillus sp. Car19的发酵条件优化 | 第34-50页 |
| 3.1 实验材料 | 第34-35页 |
| 3.1.1 实验菌株 | 第34页 |
| 3.1.2 实验试剂 | 第34页 |
| 3.1.3 主要仪器 | 第34-35页 |
| 3.1.4 培养基 | 第35页 |
| 3.2 实验方法 | 第35-40页 |
| 3.2.1 Bacillus sp. Car19种子液的培养 | 第35页 |
| 3.2.2 Bacillus sp. Car19的发酵条件优化 | 第35-40页 |
| 3.3 结果与分析 | 第40-48页 |
| 3.3.1 单因素实验结果 | 第40-43页 |
| 3.3.2 Plackett-Burman实验确定影响Bacillus sp. Car19产酶量的主要因素 | 第43-44页 |
| 3.3.3 最陡爬坡实验结果 | 第44页 |
| 3.3.4 响应面Box-Behnken法获得最优发酵条件结果 | 第44-48页 |
| 3.4 讨论 | 第48页 |
| 3.5 小结 | 第48-50页 |
| 第4章 Bacillus sp. Car19产卡拉胶酶的分离纯化及酶学性质研究 | 第50-65页 |
| 4.1 实验材料 | 第50-51页 |
| 4.1.1 菌种与培养基 | 第50页 |
| 4.1.2 主要试剂 | 第50-51页 |
| 4.1.3 主要仪器 | 第51页 |
| 4.2 实验方法 | 第51-55页 |
| 4.2.1 粗酶粉的制备 | 第51页 |
| 4.2.2 蛋白含量的测定 | 第51-52页 |
| 4.2.3 洗脱液的活性追踪 | 第52页 |
| 4.2.4 卡拉胶酶的分离纯化 | 第52-53页 |
| 4.2.5 SDS-PAGE电泳 | 第53-54页 |
| 4.2.6 卡拉胶酶酶学性质研究 | 第54-55页 |
| 4.3 结果与分析 | 第55-63页 |
| 4.3.1 卡拉胶酶的分离纯化 | 第55-57页 |
| 4.3.2 SDS-PAGE电泳确定卡拉胶酶纯度和分子量 | 第57-58页 |
| 4.3.3 酶学性质研究 | 第58-63页 |
| 4.4 讨论 | 第63-64页 |
| 4.5 小结 | 第64-65页 |
| 第5章 卡拉胶寡糖促生抗病实验 | 第65-74页 |
| 5.1 实验材料 | 第65-66页 |
| 5.1.1 菌种与培养基 | 第65-66页 |
| 5.1.2 主要试剂和材料 | 第66页 |
| 5.1.3 主要仪器 | 第66页 |
| 5.2 实验方法 | 第66-69页 |
| 5.2.1 卡拉胶寡糖的制备 | 第66-67页 |
| 5.2.2 卡拉胶寡糖对小麦种子萌发作用试验 | 第67页 |
| 5.2.3 卡拉寡糖抗病毒病小区试验 | 第67-68页 |
| 5.2.4 卡拉寡糖对黄瓜白粉病防治试验 | 第68-69页 |
| 5.3 结果与分析 | 第69-73页 |
| 5.3.1 卡拉胶寡糖的制备 | 第69页 |
| 5.3.2 卡拉胶寡糖对小麦种子萌发作用试验 | 第69-70页 |
| 5.3.3 卡拉寡糖抗病毒病小区试验 | 第70-71页 |
| 5.3.4 卡拉寡糖对黄瓜白粉病防治试验 | 第71-73页 |
| 5.4 讨论 | 第73页 |
| 5.5 小结 | 第73-74页 |
| 第6章 总结与展望 | 第74-77页 |
| 6.1 总结 | 第74-75页 |
| 6.2 展望 | 第75-77页 |
| 参考文献 | 第77-84页 |
| 致谢 | 第84-85页 |
| 硕士期间研究成果 | 第85页 |
