| 致谢 | 第5-6页 |
| 引言 | 第6-10页 |
| 中文摘要 | 第10-14页 |
| Abstract | 第14-18页 |
| 缩略表 | 第19-20页 |
| 计量单位 | 第20-23页 |
| 第一部分:携带miR-34a和携带Smac的溶瘤痘苗病毒联合治疗多发性骨髓瘤的研究 | 第23-55页 |
| 1.1 前言 | 第23-25页 |
| 1.2 实验材料 | 第25-28页 |
| 1.2.1 细胞株与OVVs | 第25页 |
| 1.2.2 主要试剂 | 第25-26页 |
| 1.2.3 引物的设计和合成 | 第26页 |
| 1.2.4 主要溶液的配制 | 第26-27页 |
| 1.2.5 主要仪器和设备 | 第27-28页 |
| 1.3 主要实验方法 | 第28-39页 |
| 1.3.1 病毒包装部分 | 第28-34页 |
| 1.3.2 细胞实验部分 | 第34-38页 |
| 1.3.3 动物实验部分 | 第38-39页 |
| 1.4 统计学分析 | 第39页 |
| 1.5 实验结果 | 第39-51页 |
| 1.5.1 溶瘤痘苗病毒OVV-miR-34a的构建 | 第39-40页 |
| 1.5.2 体外实验检测OVV-miR-34a协同性增强OVV-Smac诱导的细胞死亡 | 第40-43页 |
| 1.5.3 体外实验检测OVV-miR-34a协同性增强OVV-Smac诱导的细胞凋亡以及相关信号通路的激活 | 第43-48页 |
| 1.5.4 动物实验检测OVV-miR-34a联合OVV-Smac的体内抗肿瘤效果 | 第48-51页 |
| 1.6 讨论 | 第51-53页 |
| 1.7 结论 | 第53-55页 |
| 第二部分:痘苗病毒介导的Beclin-1过表达诱导的自噬对血液肿瘤的抑制作用及其分子机制研究 | 第55-81页 |
| 2.1 前言 | 第55-57页 |
| 2.2 实验材料 | 第57-58页 |
| 2.2.1 细胞株与OVVs | 第57页 |
| 2.2.2 主要试剂 | 第57-58页 |
| 2.2.3 主要实验仪器 | 第58页 |
| 2.2.4 引物的设计与合成 | 第58页 |
| 2.3 主要实验方法 | 第58-60页 |
| 2.3.1 病毒包装部分:具体参照第一部分内容 | 第58页 |
| 2.3.2 细胞实验部分 | 第58-60页 |
| 2.3.3 动物实验部分 | 第60页 |
| 2.4 统计学分析 | 第60-61页 |
| 2.5 实验结果 | 第61-78页 |
| 2.5.1 溶瘤痘苗病毒OVV-Beclin1的构建 | 第61页 |
| 2.5.2 OVV-Beclin1在白血病和骨髓瘤细胞株中选择复制能力的检测 | 第61-63页 |
| 2.5.3 MTT检测OVV-Beclin1对白血病及骨髓瘤细胞的体外杀伤作用及安全性评价 | 第63-64页 |
| 2.5.4 检测OVV-Beclin1是否通过诱导细胞凋亡的方式抑制细胞增殖 | 第64-66页 |
| 2.5.5 检测OVV-Beclin1是否通过诱导自噬性细胞死亡的方式抑制血液肿瘤细胞增殖 | 第66-71页 |
| 2.5.6 OVV-Beclin1通过激活SIRT1-LC3去乙酰化途径诱导细胞自噬发生 | 第71-75页 |
| 2.5.7 构建K562-luciferase nod-SCID白血病小鼠模型及全身给药治疗白血病的体内实验研究 | 第75-78页 |
| 2.6 讨论 | 第78-80页 |
| 2.7 总结 | 第80-81页 |
| 参考文献 | 第81-97页 |
| 综述 | 第97-114页 |
| 参考文献 | 第105-114页 |
| 作者简介和博士期间取得的科研成果 | 第114-115页 |
| 附博士期间发表文章 | 第115-116页 |
| 附件 | 第116-126页 |
