| 摘要 | 第4-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 1 绪论 | 第10-22页 |
| 1.1 纳米材料概述 | 第10-11页 |
| 1.2 纳米氧化锌概述 | 第11-14页 |
| 1.2.1 纳米氧化锌的应用 | 第11页 |
| 1.2.2 纳米氧化锌的生物学效应 | 第11-13页 |
| 1.2.3 纳米氧化锌的安全性问题 | 第13-14页 |
| 1.3 毒理学研究 | 第14-16页 |
| 1.3.1 毒理学概述 | 第14-15页 |
| 1.3.2 纳米毒理学 | 第15-16页 |
| 1.4 纳米颗粒导致细胞凋亡 | 第16-20页 |
| 1.4.1 纳米颗粒引起的氧化应激 | 第16-17页 |
| 1.4.2 纳米颗粒造成DNA损伤 | 第17-19页 |
| 1.4.3 细胞凋亡简述 | 第19-20页 |
| 1.5 立题依据和意义 | 第20-22页 |
| 2 纳米氧化锌的物化特性 | 第22-28页 |
| 2.1 实验材料与仪器 | 第22页 |
| 2.1.1 纳米氧化锌 | 第22页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第22页 |
| 2.2 实验方法 | 第22-24页 |
| 2.2.1 透射电子显微镜TEM观察ZnO NPs的步骤 | 第22页 |
| 2.2.2 扫描电子显微镜SEM观察ZnO NPs的步骤 | 第22-23页 |
| 2.2.3 ZnO NPs的X衍射观察步骤 | 第23页 |
| 2.2.4 ZnO NPs的FTIR观察步骤 | 第23页 |
| 2.2.5 ZnO NPs的AMF观察步骤 | 第23-24页 |
| 2.3 结果与分析 | 第24-27页 |
| 2.3.1 ZnO NPs的TEM和SEM成像分析 | 第24-25页 |
| 2.3.2 ZnO NPs的XRD和FTIR光谱分析 | 第25-26页 |
| 2.3.3 ZnO NPs的AFM分析 | 第26-27页 |
| 2.4 讨论 | 第27-28页 |
| 3 纳米氧化锌的细胞实验部分 | 第28-53页 |
| 3.1 实验预备部分 | 第28-32页 |
| 3.1.1 实验仪器和试剂部分 | 第28-30页 |
| 3.1.2 细胞复苏、培养与冻存 | 第30-32页 |
| 3.2 实验方法 | 第32-43页 |
| 3.2.1 MTT法和LDH释放检测ZnO NPs的细胞毒性 | 第32-34页 |
| 3.2.2 ROS生成与检测 | 第34页 |
| 3.2.3 TEM检测细胞对ZnO NPs的吞噬 | 第34-35页 |
| 3.2.4 TUNEL和JC-1 分析 | 第35-38页 |
| 3.2.5 非正常细胞核检测 | 第38-39页 |
| 3.2.6 细胞免疫荧光 | 第39-41页 |
| 3.2.7 蛋白杂交 | 第41-43页 |
| 3.3 统计方法 | 第43-44页 |
| 3.4 结果与分析 | 第44-50页 |
| 3.4.1 MTT和LDH释放检测结果 | 第44-45页 |
| 3.4.2 ROS检测结果 | 第45页 |
| 3.4.3 细胞吞噬ZnO NPs的结果 | 第45-47页 |
| 3.4.4 传统的DNA损伤分析 | 第47-48页 |
| 3.4.5 γ-H2AX和RAD51位点及蛋白表达分析 | 第48-49页 |
| 3.4.6 ZnO NPs诱发细胞凋亡的检测 | 第49-50页 |
| 3.5 讨论 | 第50-53页 |
| 4 ZnO NPs造成雄性小鼠生殖力损伤 | 第53-60页 |
| 4.1 实验材料与仪器 | 第53-54页 |
| 4.1.1 实验动物 | 第53页 |
| 4.1.2 实验仪器 | 第53页 |
| 4.1.3 实验试剂 | 第53-54页 |
| 4.2 实验方法 | 第54-55页 |
| 4.2.1 实验分组和小鼠药物处理 | 第54页 |
| 4.2.2 睾丸组织切片与HE染色 | 第54-55页 |
| 4.2.3 小鼠精子质量评定 | 第55页 |
| 4.3 统计方法 | 第55-56页 |
| 4.4 结果与分析 | 第56-58页 |
| 4.4.1 ZnO NPs造成曲细精管异常 | 第56-57页 |
| 4.4.2 小鼠畸形精子统计 | 第57-58页 |
| 4.5 讨论 | 第58-60页 |
| 5 结论 | 第60-61页 |
| 参考文献 | 第61-77页 |
| 致谢 | 第77-79页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第79页 |
