| 致谢 | 第1-9页 |
| 摘要 | 第9-10页 |
| 第一章 文献综述 | 第10-18页 |
| 1 我国农药工业现状及未来发展趋势 | 第10页 |
| 2 有机氯农药 | 第10页 |
| ·有机氯农药的使用状况与危害 | 第10页 |
| 3 除草剂 | 第10-11页 |
| ·除草剂的发展概况 | 第10-11页 |
| 4 二氯喹啉酸 | 第11-12页 |
| ·二氯喹啉酸简介 | 第11页 |
| ·二氯喹啉酸对土壤微生物和农作物的影响 | 第11-12页 |
| ·对土壤微生态的影响 | 第11-12页 |
| ·对农作物的影响 | 第12页 |
| ·二氯喹啉酸自然条件下的降解 | 第12页 |
| ·二氯喹啉酸残留测定方法的研究 | 第12页 |
| 5 农药的微生物降解及污染土壤的修复 | 第12-16页 |
| ·农药降解微生物 | 第12-13页 |
| ·参与杂环芳香族化合物降解的微生物 | 第13-14页 |
| ·细菌修复农药污染土壤的机理 | 第14-16页 |
| ·酶促反应 | 第14页 |
| ·矿化作用 | 第14页 |
| ·共代谢作用 | 第14-15页 |
| ·生化作用 | 第15-16页 |
| 6 本研究的目的与意义 | 第16-18页 |
| 第二章 二氯喹啉酸降解菌的分离与鉴定 | 第18-26页 |
| 1 材料和方法 | 第18-20页 |
| ·药品 | 第18页 |
| ·土样 | 第18页 |
| ·仪器 | 第18页 |
| ·培养基 | 第18-19页 |
| ·二氯喹啉酸降解菌的富集培养和驯化 | 第19页 |
| ·菌株分离 | 第19页 |
| ·分离菌株的形态观察 | 第19页 |
| ·分离菌株的生理生化试验 | 第19页 |
| ·分离菌株的16S rDNA 的PCR 扩增、序列测定及系统发育分析 | 第19页 |
| ·分离菌株的底物降解谱试验 | 第19页 |
| ·分离菌株在LB 培养基中的生长曲线 | 第19-20页 |
| 2 结果与讨论 | 第20-25页 |
| ·二氯喹啉酸降解菌的形态特征 | 第20页 |
| ·分离菌株F1 的生理生化鉴定 | 第20页 |
| ·分离菌株F1 的16S rDNA 序列测定及系统发育分析 | 第20-23页 |
| ·分离菌株 F1 的底物降解广谱性实验 | 第23-24页 |
| ·二氯喹啉酸降解菌在LB 培养基中的生长曲线 | 第24-25页 |
| 3 小结 | 第25-26页 |
| 第三章 菌株F1 的降解特性研究 | 第26-33页 |
| 1 材料与方法 | 第26-27页 |
| ·供试菌株 | 第26页 |
| ·主要仪器 | 第26页 |
| ·主要试剂 | 第26页 |
| ·主要培养基 | 第26页 |
| ·接种母液的制备 | 第26页 |
| ·二氯喹啉酸浓度的测定方法 | 第26-27页 |
| ·二氯喹啉酸起始浓度对F1 菌株生长和降解二氯喹啉酸的影响 | 第27页 |
| ·温度对菌株F1 降解的影响 | 第27页 |
| ·pH 值对F1 菌株生长和降解二氯喹啉酸的影响 | 第27页 |
| ·F1 菌株生长和降解二氯喹啉酸之间的关系 | 第27页 |
| ·外加碳源葡萄糖对菌株F1 生长和降解二氯喹啉酸的影响 | 第27页 |
| 2 结果与分析 | 第27-32页 |
| ·二氯喹啉酸起始浓度对F1 菌株降解二氯喹啉酸的影响 | 第27-28页 |
| ·温度对F1 菌株降解二氯喹啉酸的影响 | 第28-29页 |
| ·pH 值对F1 菌株降解二氯喹啉酸的影响 | 第29-30页 |
| ·菌株 F1 以二氯喹啉酸为唯一碳源、氮源的生长曲线和二氯喹啉酸降解率之间的关系 | 第30-31页 |
| ·外加碳源葡萄糖对菌株F1 生长和降解二氯喹啉酸的影响 | 第31-32页 |
| 3 小结 | 第32-33页 |
| 第四章 菌株F1 对土壤中二氯喹啉酸的降解 | 第33-36页 |
| 1 材料和方法 | 第33-34页 |
| ·供试菌株 | 第33页 |
| ·主要试剂与仪器 | 第33页 |
| ·接种菌液制备 | 第33页 |
| ·二氯喹啉酸在土壤中降解率的测定 | 第33页 |
| ·不同接菌量对土壤中同一浓度二氯喹啉酸的降解 | 第33-34页 |
| ·同一菌种量对土壤中不同浓度二氯喹啉酸的降解 | 第34页 |
| 2 结果与分析 | 第34-35页 |
| ·不同接种量对土壤中同一浓度二氯喹啉酸降解的影响 | 第34页 |
| ·同一接种量对土壤中不同浓度二氯喹啉酸降解的影响 | 第34-35页 |
| 3 小结 | 第35-36页 |
| 第五章 二氯喹啉酸胁迫对菌株F1 的影响 | 第36-45页 |
| 1 材料与方法 | 第36-39页 |
| ·供试菌株 | 第36页 |
| ·主要仪器 | 第36页 |
| ·主要试剂 | 第36页 |
| ·主要培养基 | 第36-37页 |
| ·接种母液的制备 | 第37页 |
| ·邻苯二酚l, 2-双加氧酶的酶活分析 | 第37页 |
| ·酶活测定 | 第37页 |
| ·SDS-PAGE 供试菌体的培养与制备 | 第37页 |
| ·对照组菌体的培养与制备 | 第37页 |
| ·处理组菌体的培养与制备 | 第37页 |
| ·菌体的全蛋白溶液制备 | 第37页 |
| ·SDS-PAGE | 第37-38页 |
| ·菌体F1 的RNA 的提取 | 第38-39页 |
| ·引物设计 | 第39页 |
| ·RNA 反转录cDNA | 第39页 |
| ·PCR 扩增 | 第39页 |
| 2 结果与讨论 | 第39-44页 |
| ·邻苯二酚双加氧酶酶活分析 | 第39-40页 |
| ·菌株F1 的全蛋白质SDS 电泳分析 | 第40-41页 |
| ·邻苯二酚1, 2-双加氧酶基因的扩增 | 第41-44页 |
| ·邻苯二酚1, 2-双加氧酶基因的RT-PCR | 第44页 |
| 3 小结 | 第44-45页 |
| 研究结论及展望 | 第45-46页 |
| 结论 | 第45页 |
| 展望 | 第45-46页 |
| 参考文献 | 第46-49页 |
| ABSTRACT | 第49页 |
