| 摘要 | 第1-11页 |
| Abstract | 第11-13页 |
| 英文缩略词说明 | 第13-14页 |
| 第一章 绪论 | 第14-27页 |
| 1 螺旋藻概述 | 第14-15页 |
| ·研究历史 | 第14页 |
| ·生物学特性 | 第14页 |
| ·营养价值 | 第14-15页 |
| 2 螺旋藻多糖研究进展 | 第15-20页 |
| ·多糖提取方法 | 第15-16页 |
| ·热水浸提法 | 第15页 |
| ·碱液浸提法 | 第15页 |
| ·微波辅助提取法 | 第15-16页 |
| ·超声波辅助提取法 | 第16页 |
| ·反复冻融破壁提取法 | 第16页 |
| ·酶辅助提取法 | 第16页 |
| ·多糖脱蛋白 | 第16-18页 |
| ·Sevag法 | 第16-17页 |
| ·三氯乙酸法 | 第17页 |
| ·三氟三氯乙烷法蛋白酶法离子交换树脂法 | 第17页 |
| ·蛋白酶法 | 第17页 |
| ·离子交换树脂法 | 第17-18页 |
| ·径向流动色谱法 | 第18页 |
| ·螺旋藻多糖降血糖活性研究 | 第18-20页 |
| ·不同药物对诱导小鼠糖尿病模型的影响 | 第19页 |
| ·小鼠种类及药物溶媒对诱导小鼠糖尿病模型的影响 | 第19页 |
| ·药物剂量对诱导小鼠糖尿病模型的影响 | 第19-20页 |
| ·给药前禁食时间对诱导小鼠糖尿病模型的影响 | 第20页 |
| ·给药方法对诱导小鼠糖尿病模型的影响 | 第20页 |
| 3 藻蓝蛋白研究进展 | 第20-25页 |
| ·藻蓝蛋白提取方法 | 第20-21页 |
| ·反复冻融破壁 | 第20-21页 |
| ·溶胀法破壁 | 第21页 |
| ·超声波破壁 | 第21页 |
| ·化学试剂法破壁 | 第21页 |
| ·酶溶法 | 第21页 |
| ·藻蓝蛋白纯化 | 第21-25页 |
| ·盐析法 | 第21-22页 |
| ·等电点沉降法 | 第22页 |
| ·色谱法 | 第22-23页 |
| ·双水相萃取 | 第23-24页 |
| ·反胶团萃取 | 第24-25页 |
| 4 研究意义 | 第25-27页 |
| 第二章 螺旋藻多糖与蛋白质的初步分离 | 第27-48页 |
| 1 硫酸铵沉降法 | 第27-32页 |
| ·材料 | 第27-28页 |
| ·试剂 | 第27-28页 |
| ·仪器 | 第28页 |
| ·方法 | 第28-29页 |
| ·螺旋藻水提液提取方法 | 第28页 |
| ·硫酸铵沉降法流程 | 第28页 |
| ·多糖含量测定方法 | 第28-29页 |
| ·蛋白质含量测定方法 | 第29页 |
| ·藻蓝蛋白含量及纯度测定方法 | 第29页 |
| ·结果与分析 | 第29-32页 |
| ·葡萄糖标准曲线 | 第29-30页 |
| ·蛋白质标准曲线 | 第30页 |
| ·硫酸铵沉降多糖与蛋白质 | 第30-31页 |
| ·硫酸铵沉降藻蓝蛋白 | 第31-32页 |
| 2 双水相萃取法 | 第32-40页 |
| ·材料 | 第32-33页 |
| ·试剂 | 第32页 |
| ·仪器 | 第32-33页 |
| ·方法 | 第33页 |
| ·螺旋藻水提液的制备 | 第33页 |
| ·双水相相图的制作 | 第33页 |
| ·双水相体系的配制 | 第33页 |
| ·计算方法 | 第33页 |
| ·结果与分析 | 第33-40页 |
| ·PEG2000-硫酸镁双水相相图 | 第33-34页 |
| ·PEG2000质量分数对双水相体系及藻蓝蛋白萃取的影响 | 第34-35页 |
| ·硫酸镁质量分数对双水相体系及藻蓝蛋白萃取的影响 | 第35-36页 |
| ·离子强度对双水相体系及藻蓝蛋白萃取的影响 | 第36-37页 |
| ·pH值对双水相体系的影响 | 第37页 |
| ·正交试验 | 第37-39页 |
| ·双水相反萃取藻蓝蛋白 | 第39-40页 |
| ·藻蓝蛋白萃取与反萃取 | 第40页 |
| 3 树脂法 | 第40-43页 |
| ·材料 | 第40-41页 |
| ·试剂 | 第40-41页 |
| ·仪器 | 第41页 |
| ·方法 | 第41-42页 |
| ·螺旋藻水提液 | 第41页 |
| ·离子交换树脂预处理 | 第41页 |
| ·静态吸附试验 | 第41-42页 |
| ·动态吸附试验 | 第42页 |
| ·结果与分析 | 第42-43页 |
| ·溶液pH值对树脂吸附多糖、蛋白质性能的影响 | 第42-43页 |
| ·717树脂动态吸附蛋白质 | 第43页 |
| 4 酸沉降法 | 第43-45页 |
| ·材料 | 第43-44页 |
| ·试剂 | 第43-44页 |
| ·仪器 | 第44页 |
| ·方法 | 第44页 |
| ·螺旋藻水提液 | 第44页 |
| ·pH值对盐酸法沉降多糖和蛋白质的影响 | 第44页 |
| ·时间对盐酸沉降的影响 | 第44页 |
| ·结果与分析 | 第44-45页 |
| ·pH值对盐酸法沉降多糖和蛋白质的影响 | 第44-45页 |
| ·时间对盐酸沉降的影响 | 第45页 |
| 5 结论 | 第45-48页 |
| 第三章 藻蓝蛋白的纯化及稳定性实验 | 第48-55页 |
| 1 材料 | 第48-49页 |
| ·试剂 | 第48页 |
| ·仪器 | 第48-49页 |
| 2 方法 | 第49-50页 |
| ·藻蓝蛋白提取方法 | 第49页 |
| ·DEAE SephadexA25柱层析 | 第49页 |
| ·Sephadex G200柱层析 | 第49-50页 |
| ·藻蓝蛋白稳定性实验 | 第50页 |
| 3 结果与分析 | 第50-54页 |
| ·DEAE SephadexA25柱层析 | 第50-51页 |
| ·Sephadex G200柱层析 | 第51页 |
| ·藻蓝蛋白稳定性实验 | 第51-54页 |
| ·pH值对藻蓝蛋白稳定性的影响 | 第51-52页 |
| ·温度对藻蓝蛋白稳定性的影响 | 第52-53页 |
| ·光照对藻蓝蛋白稳定性的影响 | 第53页 |
| ·酒精对藻蓝蛋白稳定性的影响 | 第53-54页 |
| 4 结论 | 第54-55页 |
| 第四章 螺旋藻多糖降血糖活性实验 | 第55-60页 |
| 1 材料 | 第55页 |
| ·试剂 | 第55页 |
| ·仪器 | 第55页 |
| 2 实验方法 | 第55-57页 |
| ·螺旋藻多糖制取 | 第55-56页 |
| ·四氧嘧啶溶媒对小鼠糖尿病模型建立的影响 | 第56页 |
| ·螺旋藻多糖对四氧嘧啶所致糖尿病小鼠的影响 | 第56-57页 |
| 3 结果与分析 | 第57-58页 |
| ·四氧嘧啶溶媒对小鼠糖尿病模型建立的影响 | 第57页 |
| ·螺旋藻多糖对四氧嘧啶所致糖尿病小鼠血糖的影响 | 第57-58页 |
| 4 结论 | 第58-60页 |
| 参考文献 | 第60-65页 |
| 致谢 | 第65页 |