英文缩写字表 | 第1-6页 |
中文摘要 | 第6-12页 |
英文摘要 | 第12-20页 |
前言 | 第20-74页 |
材料与方法 | 第22-34页 |
1. 材料 | 第22-23页 |
1.1. 实验动物 | 第22页 |
1.2. 试剂和药品 | 第22-23页 |
1.3. 仪器 | 第23页 |
2. 方法 | 第23-34页 |
2.1. 关节炎大鼠模型 | 第23页 |
2.2. 测痛方法 | 第23页 |
2.3. 电针方法 | 第23-24页 |
2.4. 寡聚核苷酸探针的标记 | 第24页 |
2.5. 寡聚核苷酸标记探针的检测 | 第24页 |
2.6. 组织切片的制备 | 第24页 |
2.7. 免疫组织化学法(ABC法) | 第24-25页 |
2.8. 原位杂交组织化学法(漂浮法) | 第25-26页 |
2.9. 荧光双标 | 第26页 |
2.10. 胎鼠神经元原代培养及组化鉴定 | 第26-27页 |
2.11. 原代神经元培养给药方法及细胞收集 | 第27-28页 |
2.12. WesternBlot | 第28-29页 |
2.13. 反转录-聚合酶链式反应(RT-PCR) | 第29-30页 |
2.14. 统计分析 | 第30-31页 |
2.15. 有关溶液的配制 | 第31-34页 |
结果 | 第34-74页 |
1. 曲马多及电针对关节炎大鼠的镇痛作用观察 | 第34-41页 |
1.1. 单次腹腔注射不同剂量曲马多对关节炎大鼠的镇痛作用 | 第34页 |
1.2. 单次腹腔注射曲马多与电针合用对关节炎大鼠的镇痛作用 | 第34页 |
1.3. 多次腹腔注射不同剂量曲马多对关节炎大鼠的镇痛作用 | 第34-35页 |
1.4. 多次腹腔注射曲马多和电针合用对关节炎大鼠的镇痛作用 | 第35-41页 |
2. 曲马多与电针对关节炎大鼠中枢5-HT系统的影响 | 第41-55页 |
2.1. 关节炎大鼠脑内与痛觉调制有关的核团5-HT2A受体mRNA表达的变化 | 第41-43页 |
2.2. 曲马多与电针对关节炎大鼠脑内核团及脊髓背角5-HT2A受体mRNA表达的影响 | 第43-49页 |
2.3. 曲马多与电针对关节炎大鼠脑内核团及脊髓背角5-HT合成的影响 | 第49-55页 |
3. 曲马多与电针对关节炎大鼠脑内与痛觉调制有关核团和脊髓背角孤啡肽的影响 | 第55-65页 |
3.1. 曲马多与电针对关节炎大鼠脑内和脊髓背角前孤啡肽原(ppOFQ)mRNA表达的影响 | 第55-61页 |
3.2. 曲马多与电针对关节炎大鼠脑内及脊髓背角孤啡肽样免疫反应(OFQ-IR)阳性细胞数的影响 | 第61-65页 |
4. 中枢5-HT系统对孤啡肽合成的影响 | 第65-71页 |
4.1. 5 -HT2A受体mRNA和OFQ的共存关系 | 第65-69页 |
4.2. 离体条件下曲马多对胎鼠脑干神经元ppOFQmRNA表达的影响 | 第69-71页 |
5. 曲马多与电针镇痛的信号转导途径的初步探讨 | 第71-74页 |
5.1. 曲马多与电针对关节炎大鼠脑干细胞PKA-Cβ合成的影响 | 第71页 |
5.2. 曲马多与电针对关节炎大鼠脊髓细胞PKA-Cβ合成的影响 | 第71页 |
5.3. 离体条件下曲马多对胎鼠脑干神经元PKA-Cβ含量的影响 | 第71-74页 |
讨论 | 第74-81页 |
结论 | 第81-82页 |
参考资料 | 第82-92页 |
附录 | 第92-93页 |
致谢 | 第93-94页 |
综述 | 第94-102页 |
References | 第102-110页 |