| 摘要 | 第1-12页 |
| Abstract | 第12-15页 |
| 缩写语表 | 第15-16页 |
| 1 前言 | 第16-37页 |
| ·节水抗旱稻(WDR)研究目的和意义 | 第16-17页 |
| ·植物对干旱响应的生理机制 | 第17-20页 |
| ·植物干旱胁迫响应类型及表型 | 第17-18页 |
| ·植物干旱胁迫响应类型 | 第17-18页 |
| ·植物根系发育与抗旱性 | 第18页 |
| ·植物叶片形态与干旱胁迫 | 第18页 |
| ·干旱胁迫对光合作用的影响 | 第18-20页 |
| ·叶绿体发育及结构 | 第19页 |
| ·水分胁迫对光合作用的影响 | 第19-20页 |
| ·植物响应逆境胁迫的分子机制 | 第20-27页 |
| ·植物逆境胁迫的信号传导 | 第21-24页 |
| ·植物激素与信号传导 | 第22-23页 |
| ·细胞内信号传导 | 第23-24页 |
| ·植物抵御水分胁迫基因表达 | 第24-27页 |
| ·植物抵御水分胁迫转录调节因子 | 第24-26页 |
| ·植物抵御水分胁迫功能蛋白 | 第26页 |
| ·microRNA参与植物抵御水分胁迫过程 | 第26-27页 |
| ·DUF296结构域及AT-hook模体的结构与功能 | 第27-36页 |
| ·AT-hook模体的结构及功能 | 第27-29页 |
| ·染色体S/MARs序列及相关结合蛋白 | 第29-31页 |
| ·S/MARs序列的结构特点 | 第29-30页 |
| ·S/MARs结合蛋白(MARBPs) | 第30-31页 |
| ·S/MARs功能 | 第31页 |
| ·DUF296结构域的基本特征 | 第31-35页 |
| ·含DUF296结构域的蛋白类型 | 第31-33页 |
| ·DUF296结构域结构及功能 | 第33-35页 |
| ·含一个AT-hook和DUF296结构域的蛋白功能 | 第35-36页 |
| ·本研究目的及意义 | 第36-37页 |
| 2 材料与方法 | 第37-48页 |
| ·水稻材料 | 第37-38页 |
| ·菌株和载体 | 第38页 |
| ·水稻转录组芯片分析 | 第38-39页 |
| ·芯片分析水旱条件下水稻microRNA | 第38-39页 |
| ·水稻干旱胁迫下基因表达的芯片分析 | 第39页 |
| ·基因表达分析 | 第39-41页 |
| ·水稻非生物逆境胁迫及激素处理 | 第39-40页 |
| ·水稻Total RNA提取及反转录 | 第40页 |
| ·荧光定量PCR(qPCR) | 第40-41页 |
| ·RACE方法克隆目的基因 | 第41页 |
| ·载体构建及遗传转化 | 第41-42页 |
| ·构建遗传转化载体 | 第41-42页 |
| ·农杆菌介导转化水稻 | 第42页 |
| ·转基因水稻苗期抗逆性实验 | 第42-43页 |
| ·转基因水稻苗期耐冷性实验 | 第42-43页 |
| ·转基因植株苗期PEG模拟干旱胁迫实验 | 第43页 |
| ·转基因植株苗期耐盐实验 | 第43页 |
| ·转基因水稻成株期抗逆性试验 | 第43-44页 |
| ·抗逆性相关生理指标测定 | 第44-45页 |
| ·叶绿素(Chl)含量测定 | 第44页 |
| ·过氧化物还原酶(POD)含量测定 | 第44-45页 |
| ·组织细胞学实验 | 第45页 |
| ·气孔密度测量 | 第45页 |
| ·维管束、泡状细胞观察 | 第45页 |
| ·亚细胞定位 | 第45-46页 |
| ·酵母双杂交实验 | 第46-47页 |
| ·实验数据生物信息学分析 | 第47-48页 |
| 3 结果与分析 | 第48-107页 |
| ·水稻转录组芯片分析 | 第48-57页 |
| ·水旱条件下水稻microRNA表达变化 | 第48-53页 |
| ·水稻水旱对照下中miRNA表达模式 | 第49-53页 |
| ·干旱胁迫诱导表达miRNA参与的代谢途径分析 | 第53页 |
| ·水稻干旱胁迫下基因表达的芯片分析 | 第53-57页 |
| ·RACE及基因克隆 | 第57页 |
| ·遗传转化载体构建及遗传转化 | 第57页 |
| ·OsI17基因的功能研究 | 第57-100页 |
| ·OsI17基因及编码蛋白的结构分析 | 第58-63页 |
| ·OsI17蛋白的结构分析 | 第58页 |
| ·OsI17同源蛋白分析 | 第58-61页 |
| ·OsI17基因启动子分析 | 第61-63页 |
| ·OsI17基因遗传进化分析 | 第63-65页 |
| ·OsI17编码蛋白的遗传多样性 | 第63-64页 |
| ·OsI17基因启动子序列遗传多样性分析 | 第64-65页 |
| ·OsI17蛋白的亚细胞定位 | 第65-67页 |
| ·OsI17基因表达分析 | 第67-72页 |
| ·激素对OsI17基因表达的影响 | 第67-69页 |
| ·冷、盐及甘露醇模拟水分胁迫诱导OsI17基因表达 | 第69-70页 |
| ·干旱胁迫下OsI17基因的表达 | 第70-72页 |
| ·获得和鉴定超表达OsI17转基因水稻植株 | 第72-74页 |
| ·超表达OsI17基因水稻的生理生化性状变化 | 第74-79页 |
| ·OsI17基因增强干旱胁迫下水稻叶绿素稳定性 | 第74-75页 |
| ·转基因植株解剖结构改变 | 第75-77页 |
| ·转基因植株叶片持水能力增强 | 第77-78页 |
| ·转基因植株抗氧化能力增强 | 第78-79页 |
| ·超表达OsI17基因水稻增强苗期抗逆性 | 第79-83页 |
| ·超表达OsI17基因提高水稻低温胁迫抗性 | 第79-81页 |
| ·超表达OsI17基因提高水稻苗期盐胁迫抗性 | 第81-82页 |
| ·超表达OsI17基因提高水稻苗期抗旱性 | 第82-83页 |
| ·转基因水稻增强成株期抗逆性 | 第83-89页 |
| ·OsI17基因增强水稻在干旱胁迫解除后的分蘖能力 | 第84-85页 |
| ·超表达OsI17基因水稻家系与对照材料根系性状考察 | 第85-88页 |
| ·超表达OsI17基因水稻农艺性状考察 | 第88-89页 |
| ·OsI17超表达转基因水稻的芯片分析 | 第89-99页 |
| ·OsI17超表达植株基因表达变化分析 | 第89-96页 |
| ·OsI17超表达引发表达变化基因的启动子分析 | 第96-99页 |
| ·OsI17基因的分子功能研究 | 第99-100页 |
| ·酵母双杂交验证DUF296结构域的同源结合能力 | 第99-100页 |
| ·OsDr1基因功能初探 | 第100-107页 |
| ·OsDr1基因及蛋白结构 | 第100-101页 |
| ·OsDr1基因在水稻中的表达特征 | 第101-106页 |
| ·OsDr1基因受非生物逆境诱导表达 | 第102-104页 |
| ·OsDr1基因呈昼夜节律性表达并受干旱及光照调节 | 第104-106页 |
| ·OsDr1基因增强水稻抗旱性 | 第106-107页 |
| 4. 讨论 | 第107-117页 |
| ·芯片技术分析水稻在干旱胁迫下转录组差异 | 第107-108页 |
| ·自然干旱胁迫下水稻miRNA变化 | 第107页 |
| ·水稻抗旱与能量代谢的关系 | 第107-108页 |
| ·OsI17基因功能的探讨 | 第108-114页 |
| ·OsI17蛋白结构与功能 | 第108-109页 |
| ·OsI17蛋白调节基因表达 | 第109-110页 |
| ·OsI17基因提高水稻耐旱性、避旱性和复原抗旱性 | 第110-111页 |
| ·OsI17基因调控水稻光合系统 | 第111-113页 |
| ·OsI17基因调控水稻抗逆性的分子作用途径 | 第113-114页 |
| ·OsDr1基因与水稻抗逆性 | 第114-115页 |
| ·展望 | 第115-117页 |
| ·水稻基因功能研究及在育种中的应用 | 第115页 |
| ·OsI17基因分子功能研究 | 第115-117页 |
| 参考文献 | 第117-131页 |
| 致谢 | 第131-132页 |
| 附录 | 第132-144页 |
| 附录Ⅰ. 相关基因cDNA序列 | 第132-133页 |
| 附录Ⅱ. 图表 | 第133-135页 |
| 附录Ⅲ. 部分实验的详细操作程序 | 第135-144页 |
| 附录Ⅳ. 作者简介 | 第144页 |
