| 中文摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5页 |
| 第一章 绪论 | 第8-30页 |
| 1.1 稀土纳米荧光标记材料 | 第8-13页 |
| 1.1.1 稀土纳米荧光标记材料的发光性能 | 第8-9页 |
| 1.1.2 稀土纳米荧光标记材料的生物应用 | 第9-13页 |
| 1.2 MicroRNA | 第13-15页 |
| 1.2.1 MicroRNA介绍 | 第13-15页 |
| 1.2.2 MicroRNA在癌症诊疗中的意义 | 第15页 |
| 1.3 MicroRNA的分析检测方法 | 第15-28页 |
| 1.3.1 传统的microRNA检测方法 | 第15-18页 |
| 1.3.2 基于工具酶信号放大的microRNA检测方法 | 第18-25页 |
| 1.3.3 基于荧光纳米颗粒的microRNA检测方法 | 第25-28页 |
| 1.4 本论文拟展开的研究内容 | 第28-30页 |
| 第二章 NaEuF_4纳米颗粒的控制合成和光学性能 | 第30-36页 |
| 2.1 引言 | 第30页 |
| 2.2 实验部分 | 第30-31页 |
| 2.2.1 实验试剂 | 第30页 |
| 2.2.2 乙酸铕的合成 | 第30-31页 |
| 2.2.3 NaEuF_4稀土纳米颗粒的可控制备 | 第31页 |
| 2.2.4 仪器与表征方法 | 第31页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第31-35页 |
| 2.3.1 稀土纳米颗粒的形貌与结构表征 | 第31-33页 |
| 2.3.2 稀土纳米颗粒的光学性能研究 | 第33-35页 |
| 2.4 本章小结 | 第35-36页 |
| 第三章 NaEuF_4纳米颗粒的表面改性及其在荧光增强液中的溶解性能 | 第36-47页 |
| 3.1 引言 | 第36页 |
| 3.2 实验部分 | 第36-39页 |
| 3.2.1 实验试剂 | 第36页 |
| 3.2.2 稀土纳米颗粒的两亲性高分子包覆处理 | 第36-38页 |
| 3.2.3 荧光增强液的配制 | 第38页 |
| 3.2.4 改性后稀土纳米颗粒光稳定性测试 | 第38页 |
| 3.2.5 改性后稀土纳米颗粒在增强液中溶解动力学测试 | 第38页 |
| 3.2.6 仪器与表征方法 | 第38-39页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第39-46页 |
| 3.3.1 改性后稀土纳米颗粒的形貌 | 第39页 |
| 3.3.2 改性后稀土纳米颗粒的表面性质 | 第39-41页 |
| 3.3.3 改性后稀土纳米颗粒的光稳定性 | 第41-42页 |
| 3.3.4 改性后稀土纳米颗粒在增强液中的光学性能研究 | 第42-44页 |
| 3.3.5 改性后稀土纳米颗粒在增强液中的溶解动力学测试 | 第44-46页 |
| 3.4 本章小结 | 第46-47页 |
| 第四章 基于NaEuF_4纳米探针的miRNA-21体外检测 | 第47-58页 |
| 4.1 引言 | 第47页 |
| 4.2 实验部分 | 第47-53页 |
| 4.2.1 实验试剂及核酸探针 | 第47-48页 |
| 4.2.2 核酸捕获探针的结构设计 | 第48-49页 |
| 4.2.3 基于NaEuF_4纳米探针的miRNA-21体外检测 | 第49-53页 |
| 4.2.4 仪器与表征方法 | 第53页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第53-56页 |
| 4.3.1 基于稀土纳米探针检测miRNA的灵敏度 | 第53-54页 |
| 4.3.2 基于稀土纳米探针检测miRNA的特异性 | 第54-55页 |
| 4.3.3 基于稀土纳米探针检测复杂体系样本的miRNA | 第55-56页 |
| 4.4 本章小结 | 第56-58页 |
| 第五章 结论与展望 | 第58-60页 |
| 5.1 结论 | 第58-59页 |
| 5.2 展望 | 第59-60页 |
| 参考文献 | 第60-65页 |
| 致谢 | 第65-66页 |
| 作者简介 | 第66-67页 |
| 在学期间发表的学术论文与研究成果 | 第67页 |
