摘要 | 第10-15页 |
ABSTRACT | 第15-20页 |
缩略词 | 第21-23页 |
第一章 绪论 | 第23-63页 |
1 引言 | 第23页 |
2 硫及其相关化合物 | 第23-49页 |
2.1 H_2S简介 | 第23-43页 |
2.2 硫烷简介 | 第43-48页 |
2.3 硫代硫酸盐简介 | 第48-49页 |
3 半胱氨酸合成简介 | 第49-53页 |
3.1 大肠杆菌合成半胱氨酸的途径 | 第49-51页 |
3.2 酵母合成半胱氨酸的途径 | 第51-53页 |
4 GSH简介 | 第53-55页 |
5 Rhodanese简介 | 第55-60页 |
5.1 Rhod的分类 | 第57-58页 |
5.2 Rhod的功能 | 第58-60页 |
6 酿酒酵母Saccharomyces cerevisiae | 第60-61页 |
6.1 酿酒酵母 | 第60-61页 |
6.2 酿酒酵母的次昼夜代谢震荡 | 第61页 |
7 本论文主要研究内容 | 第61-63页 |
第二章 酵母中硫化氢的产生及功能研究 | 第63-77页 |
1 引言 | 第63页 |
2 材料方法 | 第63-71页 |
2.1 实验材料 | 第63-65页 |
2.2 实验方法 | 第65-71页 |
3 结果与讨论 | 第71-75页 |
3.1 不同酵母的硫化氢累积情况 | 第71-72页 |
3.2 酵母产生硫化氢的主要途径 | 第72-73页 |
3.3 酵母在不同生长时期硫化氢的累积情况 | 第73-74页 |
3.4 硫化氢的产量影响酵母对重金属的耐受性 | 第74-75页 |
4 本章小结 | 第75-77页 |
第三章 酵母以硫代硫酸盐作为唯一硫源合成半胱氨酸 | 第77-116页 |
1 引言 | 第77-78页 |
2 材料方法 | 第78-94页 |
2.1 实验材料 | 第78-88页 |
2.2 实验方法 | 第88-94页 |
3 结果 | 第94-112页 |
3.1 酵母可以利用硫代硫酸盐作为唯一硫源 | 第94-95页 |
3.2 分析SUL1和SUL2的表型 | 第95-97页 |
3.3 酵母通过Sul1和Sul2吸收硫代硫酸盐 | 第97-98页 |
3.4 硫代硫酸盐调控SUL1和SUL2的表达及其吸收能力 | 第98-99页 |
3.5 Cys3和Met15是硫代硫酸盐利用的必需蛋白 | 第99-100页 |
3.6 Met15不能直接以硫代硫酸盐为直接底物 | 第100-102页 |
3.7 硫氰酸酶在硫代硫酸盐利用中的作用 | 第102-104页 |
3.8 亚硫酸盐还原酶(Met5 Met10)参与硫代硫酸盐的利用 | 第104-106页 |
3.9 Rdl2具有典型的硫代硫酸盐硫转移酶活性 | 第106-111页 |
3.10 其他物种的Rhod利用硫代硫酸盐 | 第111-112页 |
4 讨论 | 第112-114页 |
5 本章小结 | 第114-116页 |
第四章 酵母对硫代硫酸盐的耐受性 | 第116-131页 |
1 引言 | 第116页 |
2 实验材料与方法 | 第116-120页 |
2.1 实验材料 | 第116-118页 |
2.2 实验方法 | 第118-120页 |
3 结果 | 第120-128页 |
3.1 硫代硫酸盐对酵母有毒害作用,且强于亚硫酸盐 | 第120-121页 |
3.2 硫代硫酸盐对酵母的毒性依赖于pH | 第121-123页 |
3.3 寻找酵母的硫代硫酸盐感受蛋白 | 第123-124页 |
3.4 Rdl1是酵母中硫代硫酸盐解毒的必需基因 | 第124-126页 |
3.5 外源表达来自其他物种的Rhod | 第126-127页 |
3.6 Rhod催化硫代硫酸盐的生成和降解 | 第127-128页 |
4 讨论 | 第128-129页 |
5 本章小结 | 第129-131页 |
第五章 全文总结 | 第131-133页 |
附录 | 第133-144页 |
参考文献 | 第144-166页 |
研究成果 | 第166-167页 |
致谢 | 第167-168页 |
学位论文评阅及答辩情况表 | 第168页 |