| 摘要 | 第4-6页 |
| abstract | 第6-7页 |
| 引言 | 第14-32页 |
| 0.1 药物传递体系 | 第14-16页 |
| 0.2 合成类药物载体 | 第16-22页 |
| 0.2.1 聚合物胶束 | 第16-18页 |
| 0.2.2 脂质体 | 第18-19页 |
| 0.2.3 无机纳米粒子 | 第19-22页 |
| 0.3 仿生类药物载体 | 第22-25页 |
| 0.3.1 脂蛋白 | 第23-24页 |
| 0.3.2 脂质聚合物纳米粒 | 第24-25页 |
| 0.4 生物类药物载体 | 第25-27页 |
| 0.4.1 红细胞药物载体 | 第25-26页 |
| 0.4.2 细胞膜微囊载体 | 第26-27页 |
| 0.5 复合类药物载体 | 第27-29页 |
| 0.5.1 生物载体/合成载体 | 第27-28页 |
| 0.5.2 合成载体/生物载体 | 第28-29页 |
| 0.6 本课题的立题依据 | 第29-32页 |
| 第1章 载药纳米粒内核的制备与表征 | 第32-45页 |
| 1.1 仪器与材料 | 第32-33页 |
| 1.1.1 实验材料 | 第32页 |
| 1.1.2 实验及测试仪器 | 第32-33页 |
| 1.2 实验方法与结果 | 第33-44页 |
| 1.2.1 体外分析方法的建立 | 第33-38页 |
| 1.2.2 索拉非尼纳米粒的制备工艺与处方优化 | 第38-41页 |
| 1.2.3 SFN-PAAssVES纳米粒的表征 | 第41-44页 |
| 1.3 讨论 | 第44页 |
| 1.4 小结 | 第44-45页 |
| 第2章 纳米红细胞膜小体包裹纳米粒的制备与表征 | 第45-56页 |
| 2.1 仪器与材料 | 第45-46页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第45页 |
| 2.1.2 实验与测试仪器 | 第45-46页 |
| 2.2 实验方法与结果 | 第46-54页 |
| 2.2.1 RDV-NPs的制备 | 第46-50页 |
| 2.2.2 RDV-NPs的制剂学性质评价 | 第50-54页 |
| 2.3 讨论 | 第54-55页 |
| 2.4 小结 | 第55-56页 |
| 第3章 纳米红细胞膜小体包裹纳米粒的细胞摄取和体外抗肿瘤活性研究 | 第56-65页 |
| 3.1 仪器与材料 | 第56-57页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第56-57页 |
| 3.1.2 实验及测试仪器 | 第57页 |
| 3.2 实验方法与结果 | 第57-63页 |
| 3.2.1 细胞培养 | 第57-58页 |
| 3.2.2 双荧光标记的RDV-NPs的制备 | 第58-59页 |
| 3.2.3 RDV-NPs的细胞摄取实验 | 第59-61页 |
| 3.2.4 RDV-NPs的体外抗肿瘤活性研究 | 第61-63页 |
| 3.3 讨论 | 第63页 |
| 3.4 小结 | 第63-65页 |
| 第4章 纳米红细胞膜小体包裹纳米粒的药代动力学研究 | 第65-76页 |
| 4.1 材料与仪器 | 第65-66页 |
| 4.1.1 试验材料 | 第65页 |
| 4.1.2 试验动物 | 第65-66页 |
| 4.1.3 试验仪器 | 第66页 |
| 4.2 体外分析方法的建立 | 第66-72页 |
| 4.2.1 色谱条件 | 第66页 |
| 4.2.2 样品处理方法 | 第66-67页 |
| 4.2.3 专属性考察 | 第67-68页 |
| 4.2.4 标准曲线 | 第68-69页 |
| 4.2.5 精密度考察 | 第69-70页 |
| 4.2.6 回收率考察 | 第70-71页 |
| 4.2.7 稳定性考察 | 第71-72页 |
| 4.3 药代动力学研究 | 第72页 |
| 4.3.1 动物分组 | 第72页 |
| 4.3.2 给药方案及取样方法 | 第72页 |
| 4.3.3 实验数据处理 | 第72页 |
| 4.4 实验结果 | 第72-74页 |
| 4.5 讨论 | 第74-75页 |
| 4.6 小结 | 第75-76页 |
| 第5章 结论与展望 | 第76-78页 |
| 5.1 结论 | 第76-77页 |
| 5.2 进一步工作方向 | 第77-78页 |
| 致谢 | 第78-79页 |
| 参考文献 | 第79-84页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文及参加科研情况 | 第84-85页 |