| 致谢 | 第7-9页 |
| 前言 | 第9-10页 |
| 摘要 | 第10-12页 |
| Abstract | 第12-14页 |
| 第一章 文献综述 | 第19-33页 |
| 1 昆虫体内的糖代谢概述 | 第19-23页 |
| 1.1 海藻糖概述 | 第19页 |
| 1.2 昆虫海藻糖代谢的研究进展 | 第19-23页 |
| 2 生态因素对昆虫糖代谢的影响 | 第23页 |
| 3 昆虫内源激素对糖代谢的影响 | 第23-27页 |
| 3.1 胰岛素insulin对糖代谢的影响 | 第23-25页 |
| 3.2 脂动激素AKH对糖代谢的影响 | 第25页 |
| 3.3 保幼激素JH对糖代谢的影响 | 第25-26页 |
| 3.4 蜕皮激素ecdysone对糖代谢的影响 | 第26-27页 |
| 4 寄生对寄主糖代谢影响的研究概况 | 第27-30页 |
| 5 RNAi在昆虫糖代谢研究中的应用 | 第30-33页 |
| 第二章 基本材料与方法 | 第33-43页 |
| 1 基本实验材料 | 第33-35页 |
| 1.1 养虫设备 | 第33-34页 |
| 1.2 供试材料 | 第34-35页 |
| 2 实验仪器及软件系统 | 第35-36页 |
| 2.1 实验仪器 | 第35页 |
| 2.2 软件系统 | 第35-36页 |
| 3 常用实验试剂及配制 | 第36-37页 |
| 3.1 试剂盒 | 第36页 |
| 3.2 其它试剂 | 第36-37页 |
| 4 常用试剂的配制 | 第37-38页 |
| 4.1 磷酸缓冲液PBS | 第37页 |
| 4.2 感受态大肠杆菌的制备 | 第37页 |
| 4.3 培养基的制备 | 第37-38页 |
| 4.4 琼脂糖凝胶电泳相关试剂 | 第38页 |
| 5 常规实验方法 | 第38-43页 |
| 5.1 TRIzol法提取总RNA | 第38页 |
| 5.2 cDNA第一链的合成 | 第38-39页 |
| 5.3 PCR反应 | 第39-40页 |
| 5.4 琼脂糖凝胶电泳及凝胶回收目的片段 | 第40-41页 |
| 5.5 连接反应 | 第41页 |
| 5.6 转化 | 第41页 |
| 5.7 质粒提取 | 第41-42页 |
| 5.8 荧光定量PCR | 第42-43页 |
| 第三章 菜蛾盘绒茧蜂寄生对小菜蛾血淋巴中糖含量的影响 | 第43-48页 |
| 1. 材料与方法 | 第43-44页 |
| 1.1 供试昆虫 | 第43页 |
| 1.2 实验方法 | 第43-44页 |
| 1.3 小菜蛾血淋巴中糖类化合物含量分析 | 第44页 |
| 1.4 数据分析 | 第44页 |
| 2. 结果与分析 | 第44-46页 |
| 2.1 海藻糖与葡萄糖标准曲线 | 第44-45页 |
| 2.2 菜蛾盘绒茧蜂寄生对小菜蛾血淋巴中海藻糖含量的影响 | 第45-46页 |
| 2.3 菜蛾盘绒茧蜂寄生对小菜蛾血淋巴中葡萄糖含量的影响 | 第46页 |
| 3. 讨论 | 第46-48页 |
| 第四章 小菜蛾糖代谢相关基因的克隆与序列分析 | 第48-60页 |
| 1 材料与方法 | 第48-50页 |
| 1.1 供试昆虫 | 第48页 |
| 1.2 序列获得 | 第48页 |
| 1.3 生物信息学分析 | 第48-50页 |
| 2 结果与分析 | 第50-59页 |
| 2.1 PxGP序列分析 | 第50-52页 |
| 2.2 PxPGM序列分析 | 第52-54页 |
| 2.3 PxTPS序列分析 | 第54-56页 |
| 2.4 PxHK序列分析 | 第56-57页 |
| 2.5 PxTRET1序列分析 | 第57-58页 |
| 2.6 PxTRE-2序列分析 | 第58-59页 |
| 3 讨论 | 第59-60页 |
| 第五章 寄生对小菜蛾海藻糖代谢相关基因转录的影响及PxTPS功能验证 | 第60-72页 |
| 1 材料方法 | 第60-64页 |
| 1.1 供试昆虫 | 第60-61页 |
| 1.2 实时荧光定量PCR检测 | 第61-62页 |
| 1.3 小菜蛾海藻糖酶酶活测定 | 第62页 |
| 1.4 双链合成 | 第62-64页 |
| 1.5 dsRNA显微注射 | 第64页 |
| 1.6 数据分析 | 第64页 |
| 2 结果与分析 | 第64-70页 |
| 2.1 菜蛾盘绒茧蜂寄生对PxGP转录水平的影响 | 第64-65页 |
| 2.2 菜蛾盘绒茧蜂寄生对PxPGM转录水平的影响 | 第65-66页 |
| 2.3 菜蛾盘绒茧蜂寄生对PxHK转录水平的影响 | 第66页 |
| 2.4 菜蛾盘绒茧蜂寄生对PxTPS转录水平的影响 | 第66-67页 |
| 2.5 菜蛾盘绒茧蜂寄生对各组织PxTPS转录的影响 | 第67-68页 |
| 2.6 菜蛾盘绒茧蜂寄生对PxTRET1转录水平的影响 | 第68页 |
| 2.7 菜蛾盘绒茧蜂寄生对PxTRE-2基因转录水平的影响 | 第68-69页 |
| 2.8 菜蛾盘绒茧蜂寄生对小菜蛾海藻糖酶酶活的影响 | 第69页 |
| 2.9 PxTPS RNAi的效果 | 第69-70页 |
| 2.10 PxTPS RNAi对小菜蛾血淋巴中海藻糖含量的影响 | 第70页 |
| 3 讨论 | 第70-72页 |
| 第六章 寄生因子对小菜蛾血淋巴中海藻糖及PxHK转录水平的影响 | 第72-77页 |
| 1 材料与方法 | 第72-74页 |
| 1.1 供试昆虫 | 第72页 |
| 1.2 实验方法 | 第72-74页 |
| 1.3 数据分析 | 第74页 |
| 2 结果与分析 | 第74-76页 |
| 2.1 菜蛾盘绒茧蜂假寄生对小菜蛾血淋巴中海藻糖含量的影响 | 第74页 |
| 2.2 CvBV、菜蛾盘绒茧蜂毒液对小菜蛾血淋巴中海藻糖含量的影响 | 第74-75页 |
| 2.3 菜蛾盘绒茧蜂毒液对PxHK转录水平含量的影响 | 第75-76页 |
| 3 讨论 | 第76-77页 |
| 第七章 总讨论 | 第77-79页 |
| 1 结论与讨论 | 第77-78页 |
| 2 本文创新之处 | 第78页 |
| 3 本文不足之处 | 第78页 |
| 4 今后的研究方向 | 第78-79页 |
| 参考文献 | 第79-88页 |
| 附录 | 第88页 |
| 教育经历 | 第88页 |
| 硕士期间发表的文聿 | 第88页 |
