| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 中英文缩写词 | 第14-15页 |
| 文献综述 | 第15-24页 |
| 引言 | 第24-25页 |
| 1 材料与方法 | 第25-35页 |
| 1.1 试验动物 | 第25页 |
| 1.2 试剂材料 | 第25页 |
| 1.3 仪器 | 第25-26页 |
| 1.4 试验溶液的配制 | 第26-27页 |
| 1.5 禾谷镰刀菌的产毒培养 | 第27页 |
| 1.5.1 禾谷镰刀菌的复苏 | 第27页 |
| 1.5.2 禾谷镰刀菌孢子液的制备 | 第27页 |
| 1.5.3 DON的产生 | 第27页 |
| 1.6 HPLC方法的建立 | 第27-28页 |
| 1.6.1 DON标品试剂的配置 | 第27页 |
| 1.6.2 DON的高效液相色谱法检测的色谱条件 | 第27-28页 |
| 1.6.3 标准曲线的建立 | 第28页 |
| 1.6.4 检测限与定量限的测定 | 第28页 |
| 1.7 霉变玉米中DON的测定 | 第28页 |
| 1.7.1 样品的预处理 | 第28页 |
| 1.7.2 样品的免疫亲和柱净化 | 第28页 |
| 1.7.3 样品的HPLC分析 | 第28页 |
| 1.8 DON的提取、纯化 | 第28-29页 |
| 1.8.1 TLC定性检测DON方法的建立 | 第28页 |
| 1.8.2 DON的提取 | 第28-29页 |
| 1.8.3 DON的粗分 | 第29页 |
| 1.8.4 DON的纯化 | 第29页 |
| 1.8.5 结晶 | 第29页 |
| 1.8.6 晶体的鉴定及纯度的测定 | 第29页 |
| 1.9 雏鸡DON体内试验 | 第29-30页 |
| 1.9.1 试验动物的选择与分组 | 第29页 |
| 1.9.2 饲养管理 | 第29页 |
| 1.9.3 样品采集与处理 | 第29-30页 |
| 1.10 血清中DON蓄积量的检测 | 第30页 |
| 1.10.1 样品的预处理 | 第30页 |
| 1.10.2 样品的HPLC分析 | 第30页 |
| 1.11 脑组织中DON蓄积量的检测 | 第30页 |
| 1.11.1 样品的预处理 | 第30页 |
| 1.11.2 样品的HPLC分析 | 第30页 |
| 1.12 DON对脑组织形态的影响 | 第30-31页 |
| 1.12.1 石蜡切片的制备 | 第30-31页 |
| 1.12.2 HE染色 | 第31页 |
| 1.13 DON对脑组织超微结构的影响 | 第31页 |
| 1.13.1 脑组织超薄切片的制备 | 第31页 |
| 1.13.2 铅铀双重染色 | 第31页 |
| 1.14 神经细胞内[Ca~(2+)]i的检测 | 第31-32页 |
| 1.14.1 样品的处理及要求 | 第31页 |
| 1.14.2 检测方法 | 第31-32页 |
| 1.15 脑组织中CAM含量的检测 | 第32页 |
| 1.15.1 样品处理及要求 | 第32页 |
| 1.15.2 检测方法 | 第32页 |
| 1.16 鸡脑组织中CAM mRNA表达量的检测 | 第32-33页 |
| 1.16.1 引物设计 | 第32页 |
| 1.16.2 总RNA的提取 | 第32页 |
| 1.16.3 逆转录扩增钙调蛋白mRNA基因 | 第32-33页 |
| 1.16.4 扩增曲线的建立 | 第33页 |
| 1.16.5 熔解曲线分析 | 第33页 |
| 1.16.6 实时荧光定量PCR检测 | 第33页 |
| 1.17 脑组织中神经递质的检测 | 第33-34页 |
| 1.17.1 神经递质标准储备液的配置 | 第33页 |
| 1.17.2 神经递质标准工作液的高效液相色谱-荧光检测的色谱条件和荧光检测参数 | 第33页 |
| 1.17.3 标准曲线的建立 | 第33-34页 |
| 1.17.4 样品的处理 | 第34页 |
| 1.17.5 样品的高效液相色谱-荧光检测分析 | 第34页 |
| 1.17.6 样品验证性试验 | 第34页 |
| 1.17.7 检测限与定量限的测定 | 第34页 |
| 1.18 数据处理 | 第34-35页 |
| 2 结果与分析 | 第35-53页 |
| 2.1 禾谷镰刀菌的产毒培养结果 | 第35-36页 |
| 2.2 DON-HPLC标准曲线的建立与检出限和定量限 | 第36页 |
| 2.3 霉变玉米中DON的测定 | 第36页 |
| 2.4 DON的提取纯化 | 第36-38页 |
| 2.4.1 TLC方法定性检测DON的结果 | 第36-37页 |
| 2.4.2 DON纯化后的结晶及鉴定结果 | 第37-38页 |
| 2.5 雏鸡生长状态及脑部剖检变化 | 第38-39页 |
| 2.6 血清中DON蓄积量的检测 | 第39-40页 |
| 2.7 脑组织中DON蓄积量的检测 | 第40-42页 |
| 2.8 DON对脑组织形态的影响 | 第42-43页 |
| 2.9 DON对脑组织超微结构的影响 | 第43-45页 |
| 2.10 神经细胞中[Ca~(2+)]i和脑组织中CAM的检测 | 第45页 |
| 2.11 鸡脑组织中CAM mRNA表达量检测结果 | 第45-48页 |
| 2.11.1 总RNA鉴定和PCR产物凝胶电泳 | 第45-46页 |
| 2.11.2 扩增曲线分析 | 第46-47页 |
| 2.11.3 溶解曲线分析 | 第47-48页 |
| 2.11.4 鸡脑组织中钙调蛋白mRNA相对表达量结果 | 第48页 |
| 2.12 神经递质标准曲线的建立与检出限和定量限 | 第48-50页 |
| 2.13 脑组织中神经递质的检测 | 第50-53页 |
| 3 讨论 | 第53-57页 |
| 3.1 禾谷镰刀菌的产毒培养 | 第53页 |
| 3.2 DON HPLC的建立 | 第53-54页 |
| 3.3 DON的提取纯化 | 第54页 |
| 3.4 雏鸡生长状态及脑部剖检变化 | 第54-55页 |
| 3.5 血清及脑组织中DON蓄积量 | 第55页 |
| 3.6 DON对脑组织结构的影响 | 第55页 |
| 3.7 DON对钙稳态的影响 | 第55-56页 |
| 3.8 DON对脑组织中神经递质的影响 | 第56-57页 |
| 4 结论 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-67页 |
| 致谢 | 第67-68页 |
| 作者简介 | 第68页 |
